Будьте всегда 120 на 70!

Содержание

Цикорий при грудном вскармливании — Дети Mail.ru

Фотобанк Лори

• Цикорий похож по вкусу на кофе, но не содержит кофеин, а значит, не оказывает неблагоприятного влияния на организм мамы и ребенка.
• Корень цикория используют как лекарство, но тогда дозу и форму препарата назначает врач.
• Напиток из цикория не обладает лечебными свойствами, но и возбуждающего действия не оказывает, поэтому врачи рекомендуют его кормящим мамам.

Польза цикория

Это неприхотливое травянистое растение с синими цветками, которое широко распространено на территории России. Цикорий растет вдоль дорог, на пустырях, возле рек и канав. 

О полезных свойствах цикория известно очень давно. Салат из него любили есть еще древние римляне.

Сегодня в Европе цикорий специально выращивают как сырье для производства лекарств и напитков. Фармакологи используют это растение почти полностью, но самой ценной его частью являются корни.

В них содержатся органические кислоты, белковые вещества, витамины группы В, сахара, пектин, аскорбиновая кислота. Но самой главной составляющей корней цикория является инулин. Это полисахарид, который усваивается диабетиками, в отличие от вредного для них крахмала.

Цикорий оказывает противовоспалительное и противомикробное действие, он улучшает пищеварение, повышает аппетит и успокаивает. В народной медицине его используют при болезнях желудочно-кишечного тракта и почек.

Можно ли пить цикорий при грудном вскармливании 

Достоинства цикория очевидны, но мнения врачей о его пользе для кормящих мам расходятся. Правда, на запрете цикория чаще настаивают сторонники строгой диеты  во время грудного вскармливания, хотя сегодня уже доказано, что необходимости в таких ограничениях нет.

Считается, что достаточно просто следовать здравому смыслу и не злоупотреблять некоторыми продуктами. Так что напиток из цикория молодым мамам вполне можно пить.

Благодаря горьковатому веществу – цикорину, содержащемуся в корнях растения, этот напиток по вкусу очень похож на кофе, поэтому женщинам не приходится ограничивать себя лишний раз, тем более, что любые запреты – это стресс, который не пойдет на пользу ни маме, ни малышу. В продаже сейчас есть множество напитков из цикория с разными добавками, но чем натуральнее будет продукт, тем он полезнее.

Если вы, все-таки, беспокоитесь о том, не повредит ли употребление цикория вашему ребенку, для начала пейте напиток маленькими порциями и наблюдайте за малышом. Если у ребенка не возникнет аллергической реакции, объем можно смело увеличивать.

Можно ли кормящей маме цикорий?

Каждый день мы с вами привыкли пить чай, кофе, а кто-то морсы и компоты. Но во время грудного вскармливания начинаем думать не только о себе, но и о возможном влиянии нашего питания на ребенка, и это хорошо!

У кофе есть прекрасная альтернатива – цикорий. В этом напитке не содержится кофеина, и он считается полезным, конечно если речь идет о настоящем цикории без всяких добавок и всевозможных примесей, которые некоторые производители добавляют в виде молотых круп. Давайте разберемся можно ли кормящей маме цикорий?

Чем может быть полезен цикорий при ГВ?

Цикорий – это растение, которое содержит много:

  • витаминов группы В и С;
  • минеральные соли;
  • железо;
  • дубильные вещества;
  • белки, пектины;
  • а также инулин, который обладает полезными свойствами для людей, больных сахарным диабетом.

Напиток, который приготовлен из цикория, имеет мягкий и приятный вкус, прекрасно воздействует на работу кишечника, обладает успокаивающим эффектом, устраняет жар и улучшает аппетит, обладает мочегонным действием.

Употребление цикория ежедневно улучшит иммунитет кормящей мамы.

Врачи рекомендуют употреблять его вместо кофе и заменять им некоторые привычные для вас напитки. Подробнее о кофе при грудном вскармливании?>>>

Следует проявить осторожность, если у вас имеются такие заболевания как геморрой, варикозное расширение вен, заболевания сосудов, гастрит. В этих случаях будет необходима консультация доктора.

И всё таки, можно ли цикорий кормящей маме?

Немного фактов

Начнем с того, что никакие исследования и эксперименты о влиянии цикория во время кормления грудью не были проведены. И если Вы никогда не употребляли этот напиток, то нельзя исключать индивидуальной непереносимости.

Поэтому, как и при введении любого нового продукта, сначала пробуйте небольшое количество этого напитка и проследите, как он повлияет на ваш организм. О системе питания кормящей мамы ребенка от 0 до 6 мес., позволяющая избежать аллергии, высыпаний, зуда и беспокойства у грудничка рассказываю в курсе Питание кормящей мамы без вреда для ребенка>>>

Не заметили отрицательного проявления – всё равно нужно умеренно принимать этот напиток, дабы избежать возможной аллергической реакции у вашего малыша, если вы всё-таки заметили проявление аллергии, то нужно немедленно отказаться от приема цикория.

В инструкции к цикорию не указано явное противопоказание к его приему во время грудного вскармливания. Для сравнения – даже беременным женщинам рекомендуют  пить его вместо кофе, поскольку он не несёт отрицательных воздействий на организм. Поэтому во время кормления грудью тоже можно!

Читайте также:

Автор: Людмила Шарова

Можно ли пить цикорий при грудном вскармливании 🚩 Дети 🚩 Другое

Цикорий — полезное растение. Он используется в медицине в качестве лекарственного средства, а в кулинарии — для изготовления приятного напитка, напоминающего по вкусу кофе. В медицине применяются и корни, и все растение. Для напитка используется корень, в котором был обнаружен инулин в большом количестве. Именно он оказывает положительное влияние на работу ЖКТ.

Применяют корень цикория при заболеваниях печени, селезенки, желудочно-кишечного тракта, желчного пузыря и других заболеваниях. Эффективен он при проблемах с обменом веществ. Кроме инулина в корнях есть органические кислоты, витамины С, В1, В2, В3, фруктоза, дубильные вещества, минеральные вещества.

Существует большой список заболеваний и состояний, при которых цикорий можно применять: гастрит, диспепсия, запор, диабет, малокровие, увеличенная селезенка, глисты, нейродермит, дерматит, экзема, псориаз, угри и много других. Принимать его можно также как желчегонное и мочегонное средство. Он действует в таких случаях мягко и не оказывает негативного влияния на организм.

Стоит отметить, что исследования, которые оценили бы воздействие цикория на малыша в период грудного вскармливания мамы, не проводились. На маму прием этого напитка, безусловно, окажет положительный эффект: выведет токсины, оздоровит микрофлору кишечника, повысит иммунитет, предупредит и снизит появившиеся отеки, нормализует стул, повысит аппетит. Не забываем, что в цикории есть витамины и минералы, которых в такой сложный период женщине очень не хватает.

А как отразится напиток из цикория на конкретном малыше, никто не сможет точно сказать. К тому же среди противопоказаний к приему цикория нет указаний по поводу периода лактации. Но есть противопоказание к использованию его у детей до двух лет. Поскольку он обладает желчегонными свойствами, то может вызвать дискомфорт и неприятные ощущения у ребенка, понос, может повысить кислотность. Его сосудорасширяющий и тонизирующий эффект может негативно отразиться на нервной системе малыша.

Возможно, он наладит стул, поспособствует развитию полезной микрофлоры в кишечнике, снизит интенсивность колик, укрепит иммунитет, но может ведь и аллергическую реакцию вызвать. Медицина не дает четких указаний по поводу цикория в период грудного вскармливания. Но поскольку он может вызывать аллергическую реакцию, то к его использованию нужно относиться так же, как и к другим аллергенам: осторожно.

Вопрос приема цикория в пищу кормящая женщина должна решить совместно с педиатром. Подход здесь будет индивидуальным. Если женщина постоянно употребляла напиток из цикория во время беременности, то после родов примерно через месяц можно пробовать возвращать его в свой рацион. До исполнения малышу месяца (в период новорожденности) вообще не рекомендуются никакие сомнительные продукты. Если кормящая мама во время беременности не пила напиток из цикория, но ранее пробовала этот продукт, то вводить его можно не ранее исполнения ребенку 6 месяцев. Но если кормящая женщина вообще никогда не использовала цикорий и напиток из него в своем питании, то вводить его в период грудного вскармливания не стоит. Лучше подождать его завершения.

Общие правила введения нового продукта в рацион мамы в период лактации применимы и к цикорию. В первый раз в утренние часы пробуется минимальное количество нового продукта. Можно выпить не более трети чашки приготовленного напитка. Наблюдается реакция ребенка на новый продукт —  от 1 до 3 суток. При отсутствии негативных реакций (вздутия живота, колик, высыпаний на коже и других) объем продукта увеличивается. Если появления негативных реакций не удалось избежать, то продукт больше не применяется. Стоит помнить, что цикорий при грудном вскармливании не запрещен. Но употреблять его можно только с разрешения врача, соблюдая при этом определенные правила.

Цикорий при грудном вскармливании: какова его польза?

Цикорий относится к группе лекарственных растений. Благодаря наличию в нем полисахарида инулина, это растение рекомендуют применять больным сахарным диабетом. Кроме того, содержание витаминов группы В, а также калия и железа, позволило применять корень растения(именно эта его часть используется в качестве лекарства) при сердечно-сосудистых заболеваниях и при нарушениях нервной системы. Поэтому будет интересно выяснить, можно ли применять цикорий при грудном вскармливании, и каково его влияние на организм ребенка.

Содержание статьи

Применение растения в лечебных целях

Кроме перечисленных выше свойств, напиток из этого растения используют как противовоспалительное, вяжущее, противомикробное средство. Содержащееся в корнях горькое вещество повышает аппетит и стимулирует пищеварительные процессы. Благоприятное воздействие напиток оказывает на печень, селезенку, желчный пузырь, имеет в своем составе холин, жиры и белки. Антимикробные вещества позволяют применять отвары из корня при заболеваниях почек, избавляя тем самым организм от отеков. Довольно широкий спектр действия наталкивает на мысль: можно ли применять цикорий при грудном вскармливании и не навредит ли это матери и ребенку.

Такой напиток, в дополнение ко всему, обладает тонизирующими свойствами.Любители кофе, которые по ряду причин не могут употреблять этот бодрящий напиток, с успехом меняют его на цикориевый напиток. Перемолотый в порошок корень этого замечательного растения с добавлением корня женьшеня оказывает тонизирующее действие, а в комбинации с шиповником – мочегонное, что особенно хорошо при заболевании почек. Поэтому кормящим мамам вместо кофе, который при грудном вскармливании употреблять не рекомендуют педиатры, следует попробовать ввести в свой рацион цикорий.   

Применение цикория при грудном вскармливании

Каких-либо специальных исследований по поводу применения цикория при грудном вскармливании не проводилось. Делать выводы о негативном влиянии такого напитка на малыша можно, только исходя из опыта мам, которые употребляли егопри грудном вскармливании.

Начинать пить цикорий следует с осторожностью и в небольших количествах, внимательно следя за реакцией малыша. Индивидуальная непереносимость возникает на любой, самый безобидный на первый взгляд, продукт питания. Поэтому не исключено возникновение у ребенка аллергической реакции, тем более, если кормящая мама никогда до этого не употребляла напиток из корня этого растения.

Если у малыша нет непереносимости цикория, его поведение остается таким же, как и прежде, а чистота кожных покровов не меняется, то употреблять этот полезный и вкусный напиток не возбраняется его маме.

Меры предосторожности при употреблении напитка

Несмотря на ряд полезных свойств, которыми обладает корень растения, следует не терять бдительности. Употреблять напиток следует в небольших количествах, особенно это актуально при грудном вскармливании, так как организм ребенка чрезвычайно чувствителен к любым нововведениям, а воздействие цикория достаточно сильное.

Хочется напомнить, что цикорий наряду с полезными свойствами нельзя применять людям с сосудистыми заболеваниями(геморрой, варикозное расширение вен), гастритом и язвой желудка. В любом случае, имея в анамнезе хронические заболевания, перед употреблением напитка из этого растения не лишним будет получить консультацию своего лечащего врача.

Можно ли цикорий при грудном вскармливании

Цикорий — это сложноцветное многолетнее растение с голубыми цветами. Плод этого растения — призматическая семянка, на кусте цикория может находится до 3–25 000 семян. Растение цветет в летний период, его плоды зреют в конце лета — середине осени. Распространен цикорий в России и на Украине.

По внешнему виду цикорий схож с васильком, поэтому его прозвали также синим цветком. У его цветков есть интересная особенность – они поворачиваются по ходу движения солнца, поэтому растение получило романтичное название невеста солнца.  

Состав лекарственного растения очень богатый, он содержит в себе витамины группы В, калий, железо, пектин, каротин и минеральные соли. О пользе этого лекарственного растения знали еще в древнем Риме, где из него готовили салаты и напитки, лечили им различные недуги.

На Руси знахарки считали, что корень этого растения обладает сильным целебным эффектом и даже способен отодвинуть приближающуюся старость.

Полезные свойства цикория:

  1. Нормализует обмен веществ, убирает шлаки и токсины.
  2. Очищает почки, нормализует состояние страдающих диабетом.
  3. Способен сделать лучше состав крови.
  4. Пробуждает аппетит, нормализует работу кишечника, спасает от изжоги.
  5. Повышает тонус организма, снимает усталость.
  6. Чистит сосуды.
  7. Имеет противовоспалительные и антибактериальные свойства.
  8. Используется как жаропонижающее средство.
  9. Улучшает зрение.
  10. Помогает для лечения подагры.

Цикорий содержит в себе инулин — органическое вещество, пребиотик, незаменимый для отличной работы системы пищеварения. Он поддерживает баланс микрофлоры кишечника, усиливает усваиваемость кальция, что крайне важно, ведь большая часть этого микроэлемента, не усваивается при приеме пищи.

В период грудного вскармливания женщины стремятся правильно и полезно питаться. Некоторые продукты употреблять не стоит, в том числе кофе, ведь в его составе имеется кофеин, вредный для малыша. Любительницам этого бодрящего напитка очень сложно отказаться от его употребления. Отличным заменителем кофе станет напиток из цикория, ведь он кофеина не содержит, а по вкусовым качествам очень схож с кофе.   

Многие молодые мамочки задаются вопросом о том, можно ли цикорий при грудном вскармливании. Ответ на этот вопрос положительный.

Врачи имеют разное мнение по вопросу разрешенности растения в период лактации, но большинство из них склоняются к тому, что напиток полезен для здоровья кормящей мамы и ее малыша. Почти сразу начинается ощутимый прилив молока, а малыш хорошо кушает и спит, проблемы с пищеварительной системой исчезают.

Он оказывает хорошее влияние на работу кишечника и нервной системы мамочки, препятствует возникновению запоров, которыми нередко страдают недавно родившие женщины. Растение улучшает деятельность желудка, спасает от изжоги.

Цикорий при грудном вскармливании особенно подойдет женщинам с проблемами иммунной системы, поскольку он оказывает противомикробное воздействие. Добавление его в рацион молодой мамы гарантирует повышение ее аппетита, что хорошо влияет на состав материнского молока: чем больше полезных веществ поступает маме, тем оно ценнее для малыша.

Совет. Цикорий во время грудного вскармливания можно пить как отвар. Приготовить его можно так: 1 чайная ложка измельченного корня заливается 200 мл кипятка, после чего смесь следует прокипятить минут десять, а потом процедить. Принимать напиток по 1/4 стакана несколько раз в день.

Помимо вышеперечисленных целебных свойств растение также является лактогонным средством. После регулярного употребления напитка из цикория, у многих женщин приливает молоко.

Внимание! Слишком большое количество напитка вредно и для мамы, и для малыша. Рекомендуется употреблять не более двух чашек напитка в сутки.  

Молодой мамочке, которая не мыслит своей жизни без кофе, но опасается навредить ребенку, следует посоветоваться с врачом-педиатром на предмет того, можно ли ей в период лактации пить цикорий. Вероятнее всего, врач посоветует начинать пробовать продукт с небольших доз и следить за реакцией на него у малыша. Если побочных эффектов не наблюдается, значит, употреблять цикорий во время грудного вскармливания женщине можно.

Цикорий не оказывает воздействия на ребенка, только при условии, что у малыша нет аллергии на него.   Если аллергия у малыша не проявилась, женщине можно пить цикорий в период грудного вскармливания. Главное правило, которое следует соблюдать: не употреблять напиток в больших количествах, ведь это растение является лекарственной травой и сильно влияет на организм.

Как приготовить напиток 

Для употребления можно приобрести готовый порошок цикория. Заваривать его просто, так же, как и растворимый кофе. Несколько чайных ложек порошка надо залить 150-200 мл горячей воды, после чего перемешать напиток. По вкусу можно будет добавить в него молоко или сливки. Много сахара добавлять не стоит, ведь сам порошок обладает сладковатым вкусом. 

Можно сварить напиток в турке. Для этого следует смешать чайную ложку порошка, 1 ложку меда и залить 150 мл воды. После этого смесь держать на плите, пока не образуемся пенка.

Для самостоятельного приготовления напитка из цикория, потребуется 5-6 корней растения.  Их необходимо вымыть, почистить, просушить. Это можно сделать в духовом шкафу при температуре 100 градусов течении четырех часов. А лучше всего – высушить растение на улице, на солнце. Высушенное растение надо разрезать на мелкие части, после чего обжарить до коричневого цвета. Затем перемолоть корни растения блендером или мельницей. Хранить порошок надо в герметичной банке в темном месте. Хранится самостоятельно изготовленный порошок около полугода.  

Напиток из цикория станет еще полезнее при добавлении в него корня женьшеня, так он будет иметь тонизирующее действие, а в сочетании с шиповником будет замечательным мочегонным средством, что особенно подходит женщинам с болезнями почек.

Как правильно выбрать 

Раньше купить растворимый цикорий было весьма непросто, и его корень готовили к употреблению в домашних условиях. Корни растения просушивали, измельчали, жарили и мололи.

Сейчас такой проблемы не существует, ведь растворимый напиток из цикория можно свободно приобрести. Продается он в отделах лечебного питания, аптеках, а также так, где продают чай и кофе.  Причем, выпускают продукт как в виде порошка, так и в виде жидкого экстракта. Плюсом последнего является то, что он прост в хранении. А вот порошок даже при незначительной влажности слипается, образует комки, теряет свои важные свойства.  Кроме того, цикорий в виде жидкого экстракта можно с успехом добавлять в сладкую выпечку. Он придаст сладостям нежный ореховый вкус.

Выбирая продукт, следует учесть, что порошок из цикория должен быть сухой и без комочков. Отдать свое предпочтение лучше продукту в вакуумной упаковке.

Хороший порошок из цикория коричневого оттенка: светлее или темнее, это зависит от степени обжарки. В более светлом варианте больше витаминов, но более поджаристый имеет более интенсивный аромат.

Покупая растворимый напиток, стоит остановить свой выбор на  качественном 100%-ном  концентрированном порошке цикория без каких-либо примесей и добавок, ведь они могут послужить причиной возникновения аллергии у ребенка или его мамы. Следует помнить, что недобросовестные производители зачастую добавляют в порошок молотые рожь и овес.

Важно. Хранить цикорий рекомендуется в герметичных банках. Набирать его из банки не следует влажной ложкой, так как он каменеет даже при небольшом попадании в него влаги. 

Противопоказания

Как и любое лекарственное растение, цикорий не может быть одинаково полезен для всех. Некоторым людям, страдающим от хронических заболеваний, следует отказаться от его употребления. Относится это и к молодым мамочкам. Так, напиток из цикория не следует употреблять женщинам, имеющим такие заболевания как:

  •  астма;
  • бронхит;
  • нарушения в работе сердечно-сосудистой системы;
  • варикоз;
  • если в организме повышено содержание витамина C;
  • проблемы с желчным пузырем.

Внимание! Если после питья цикория участился пульс, появилась тошнота и слабость, стоит обратиться к врачу и не употреблять этот напиток. Скорее всего, имеются противопоказания для применения цикория.



Post Views:
944

Цикорий при грудном вскармливании — можно или нет, польза и вред

Ароматный кофе считается самым любимым напитком у многих людей. Но во время лактации представительницам прекрасного пола такой напиток употреблять не рекомендуется, поэтому цикорий при грудном вскармливании послужит отличным заменителем по вкусовым качествам и полезным свойствам.

Кофеин, содержащийся в большом количестве в кофе, может негативно воздействовать на организм грудного ребенка, провоцируя такие ситуации: 

  • состояние повышенного возбуждения;
  • аллергические проявления на коже;
  • нарушение системы сна и бодрствования у грудничка;
  • капризность и раздражительность.

Такие изменения в состоянии малыша обусловлены тем, что кофеин просто не усваивается у него в организме и может накапливаться в тканях без тенденции к выведению. В основном так происходит, если кормящая мать выпивает несколько чашек бодрящего напитка в день. Конечно, умеренное употребление может и не иметь негативных последствий, но рисковать не представляется возможным, так как речь идет о здоровье ребенка. Тем более что есть такой замечательный и полезный натуральный напиток, как цикорий. Применяя его умеренно в своем каждодневном рационе питания, женщина получит полезные и нужные вещества для своего организма и насладится вкусом, напоминающим кофе.

Основные принципы употребления цикория

При лактации цикорий оказывает на организм женщины самое благотворное влияние, но употреблять его все равно рекомендуется в ограниченном количестве, потому что растение лекарственное и требует дозирования. В день женщина может выпить 3-4 чашки цикория в чистом виде или с добавлением сахара, молока или сливок. Сейчас в магазинах и супермаркетах представлен достаточно большой выбор цикория с различными вкусовыми добавками или другими лекарственными растениями.


Кормящей маме следует отдать предпочтение чистому виду напитка, поскольку различные добавления могут содержать химические элементы, что может спровоцировать аллергические проявления у малыша. Нужно отметить, что цикорий тоже может стать причиной сыпи аллергического характера у грудничка, как и любой другой продукт. Следовательно, мама должна вводить его в свое меню постепенно, при этом внимательно наблюдая за состоянием ребенка. Любые отклонения от нормы, связанные с употреблением цикория, считаются полным противопоказанием для его дальнейшего употребления.

Общие сведения

Можно ли цикорий употреблять женщинам, которые кормят грудью малыша? На данный вопрос можно получить исчерпывающий ответ, только тщательно изучив свойства и состав растения. Для изготовления напитка на основе цикория используют корень, который предварительно проходит определенную подготовку, то есть его измельчают, экстрагируют. Экстракцией называют добывание из корня основных полезных веществ, которые используют в составе одноименного напитка. Произрастает цикорий по всей территории стран Европы, поэтому сырьевая база достаточно доступна, чем и обусловлена относительно недорогая цена напитка. Такое неприхотливое растение имеет, на редкость, богатый состав витаминов, минералов и других органических веществ. Так, листья и корни растения содержат следующие элементы:

  • витамины группы В и аскорбиновая кислота приносят большую пользу для иммунной, сердечно-сосудистой и нервной систем человека;
  • наличие органических кислот и белковых соединений оказывают благотворное влияние на строение клеток всех органов и систем;
  • инулин, содержащийся в растении, прекрасно усваивается в организме, тем самым нормализует углеводный обмен, так как считается производной инсулина;
  • каротин крайне необходим для нормального функционирования органов зрения, кровообращения и кроветворения;
  • достаточное содержание калия, магния, железа, натрия поддерживают электролитный и солевой баланс в организме человека;
  • пектин очень благотворно влияет на пищеварение.

Напиток из цикория может значительно пополнить организм матери и ребенка полезными веществами при регулярном употреблении в умеренном количестве. Поэтому, пить цикорий при грудном вскармливании считается полезным и нужным.

Показания и противопоказания

Как и у каждого лекарственного растения, у цикория тоже есть свои плюсы и минусы, то есть показания и противопоказания.

Показания

Богатый состав цикория используется повсеместно в лечебных учреждениях, как вспомогательное средство в лечении различных патологий, так как растение имеет следующие свойства: 

  • бактерицидное;
  • противовоспалительное;
  • улучшающее работу желудочно-кишечного тракта;
  • вяжущее;
  • успокаивающее нервную систему;
  • регулирующее обменные процессы в организме;
  • повышающее иммунитет.

Обусловленное такими свойствами действие лекарственного растения применяют в лечении сердечно-сосудистых и неврологических патологий, при заболеваниях кожи, желудочно-кишечного тракта, почек и в эндокринной практике. Такой обширный спектр действия будет весьма кстати для восстановления организма кормящей мамы.

Противопоказания

Цикорий при ГВ может быть противопоказан в случае наличия у женщины варикозного расширения вен, что считается достаточно частым явлением во время и после вынашивания ребенка. Вяжущее свойство растения может спровоцировать сгущение крови, которая на участках воспалительных процессов в венах способна образовать тромбоз. Еще напиток из лечебного корня противопоказан людям, у которых диагностировалась язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки.

Представительницы прекрасного пола должны учитывать, что такой напиток из цикория значительно повышает аппетит, поэтому проблемы, связанные с лишним весом являются абсолютным противопоказанием. Индивидуальная непереносимость веществ, содержащихся в растении, тоже считается ограничением в применении.

Нашли ошибку? Выделите ее и нажмите Ctrl + Enter

Можно ли цикорий при грудном вскармливании? 👪 Способствует ли цикорий повышению иммунитета молодой мамы?

Молодые мамы не хотят отказываться от любимых напитков, но в то же время боятся навредить ребенку, поэтому сомневаются, включать ли в рацион привычные продукты. Рассмотрим, можно ли пить цикорий при грудном вскармливании, и если да, то в каких дозировках и как часто разрешено его употреблять, а когда он абсолютно противопоказан.

Кормление грудью и цикорий: совместимы ли?

Ни один специалист не даст однозначного ответа, можно ли цикорий при ГВ. Известный врач Е.О. Комаровский отмечает, что в умеренных количествах продукт разрешен при кормлении малыша. Растением лучше заменить все напитки, содержащие кофеин, которые приносят гораздо больший вред, чем цикорий.

Американские и европейские ученые, которые занимаются вопросами грудного вскармливания, с этим мнением не согласны. Они утверждают, что цикорий лучше полностью исключить из рациона при лактации, поскольку его воздействие на организм матери и ребенка еще не до конца изучено.

Многие женщины действительно предпочитают использовать цикорий как более безопасную альтернативу кофе, крепкому чаю из-за отсутствия кофеина, возбуждающего нервную систему младенца. Некоторые мамы пьют его без ограничений, отмечая исключительную пользу продукта. Врачи отмечают, что растения по-разному воздействуют на организм и не всегда положительно. Е. Комаровский утверждает, что отсутствие внешних реакций (сыпи, покраснений) не означает, что внутренних побочных эффектов тоже нет, поэтому крайне важна умеренность.

Также по результатам медицинских исследований было установлено, что растение провоцирует менструации. Если кормящая мама будет регулярно употреблять напиток, это может привести к появлению месячных, а значит и к уменьшению количества грудного молока.

Однако не стоит бояться иногда позволять себе вкусный ароматный цикорий. Он обладает массой полезных свойств:

  • способствует повышению иммунитета;
  • нормализует пищеварительные процессы и обмен веществ;
  • оказывает вяжущее действие;
  • выводит «плохой» холестерин, освобождает организм от токсинов и шлаков;
  • действует как легкое жаропонижающее, противовоспалительное, мочегонное и желчегонное средство;
  • благотворно влияет на работу сердца;
  • приводит к повышению уровня гемоглобина в крови, а значит является отличным средством профилактики анемии;
  • успокаивает нервную систему женщины и ребенка;
  • улучшает состояние волос и кожных покровов.

Абсолютные противопоказания употребления цикория при ГВ: мнения ведущих врачей

Не все кормящие мамы могут беспрепятственно употреблять вкусный бодрящий напиток. Цикорий противопоказан при:

  • сосудистых патологиях;
  • варикозном расширении вен;
  • геморрое.

Таким образом, абсолютным противопоказанием является наличие любых проблем с сосудами. Цикорий дает дополнительную нагрузку на них, поэтому лучше воздержаться от такого питья и заменить его компотом, чаем или другими напитками. Также его запрещено употреблять при желчекаменной болезни и астме.

Врачи отмечают, что говорить о стопроцентной безвредности цикория не приходится, даже если нет никаких противопоказаний. Это лекарственное растение, которое в любом случае может оказывать негативное влияние на организм женщины и малыша, употребляющего такое молоко. Возможные побочные реакции:

  • Проблемы с пищеварением. Злоупотребление напитком (особенно с молоком) приводит к усиленному газообразованию, болезненным спазмам в животе, диарее. Нельзя пить цикорий в самый первый месяц жизни младенца. Если у него появится понос, это может привести к обезвоживанию.
  • Аллергия. Женщины, склонные к аллергическим реакциям, должны быть готовы к тому, что и цикорий может вызвать появление высыпаний, жжения, зуда кожи и других характерных симптомов. Кроме того, аллергия возможна и у ребенка. При появлении перечисленных признаков следует немедленно исключить цикорий из рациона.
  • Резкое падение веса. Цикорий способствует снижению аппетита, молодая мама не ощущает голод. По этой причине поначалу может внезапно упасть масса тела. Со временем организм приспособится к напитку, и вес придет в норму.
  • Ощущение сонливости. Женщина может быстрее уставать и постоянно чувствовать, что хочет поспать.

Медики обращают внимание, что важно следить за взаимодействием цикория с медикаментозными средствами. Например, не рекомендуется включать в рацион напиток при лечении таблетками от сердечно-сосудистых заболеваний.

В каком количестве, как часто и в какое время суток лучше пить цикорий при ГВ?

В первую очередь важно проконсультироваться с врачом. Напиток следует вводить маленькими порциями, постепенно их увеличивая. Необходимо внимательно наблюдать за реакциями организма ребенка и следить, не меняется ли количество выделяемого молока. Если никаких изменений нет, можно иногда позволять себе вкусное лакомство.

Конкретных дозировок не существует. В самом начале лучше пить по 1-2 чайной ложки напитка и при отсутствии побочных реакций аккуратно увеличивать дозу.

Специалисты утверждают, что в сутки кормящая мама должна употреблять не более 2 ч.л. сухого сырья, независимо от того, чем оно разбавляется (молоком, водой). Сахар добавлять не стоит. Допустимо пить цикорий 2-3 раза в неделю, но не чаще.


Сырье должно быть качественным. В нем не могут присутствовать ароматизаторы, консерванты и другие опасные компоненты. Чем натуральнее будет состав, тем большую пользу принесет напиток.

Таким образом, однозначного ответа на вопрос, можно ли цикорий при ГВ, нет. Это растительный напиток, который приводити к побочным реакциям как у матери, так и у малыша. Если нет острой необходимости, лучше заменить его чаем или компотом. Перед употреблением цикория важно проконсультироваться с врачом. Кроме того, важно выбрать продукт без вредных ароматизаторов и красителей.

Автор-эксперт: Александр Алексеевич Седулов,
врач-диагност

Вам понравилась статья? Просто нажмите на кнопки социальных сетей и поделитесь с друзьями!

Информация о корнях цикория, рецепты и факты

3085 товаров

Яблоко

Абрикосы

Артишоки

Азиатский

Спаржа

Авокадо

Бананы

Фасоль

Свекла

Болгарский перец

Ягоды

Горькая дыня

Бок Чой

Брокколи

Брюссельская капуста

Капуста

Кактус

Морковь

Цветная капуста

Сельдерей

Мангал Швейцарский

Вишня

Каштаны

Цикорий

Цитрон

Цитрус

CM

Кокос

Кукуруза

Огурцы

Даты

Драконий фрукт

дуриан

Баклажан

Яйца

Эндивий

Папоротники

Инжир

Цветы

Собирали

Fresh Origins

Чеснок

Имбирь

Грейпфрут

Виноград

Зелень

Groc

Гуавас

Травы

Джамбу

мармелад

Кале

Киви

Кумкватов

Листья

Лук-порей

Лимоны

Салат-латук

Лимау

Лаймы

Луло

Мамей

Мандарин

Манго

Мангустин

Дыня

Микро Гринс

Грибы

Нектарины

Гайки

Окра

Репчатый лук

Апельсины

Org

Орнамент

Папайя

Маракуйя

Персики

Груши

Горох

Пепино

Перец Чили

Перец сушеный

Перец

Хурма

Ананас

Сливы

Помело

Картофель

Тыквы

Айва

Редис

Рамбутан

Корень

Салак

Сапоте

Лук-шалот

Шпинат

Ростки

Кабачок

Стоунфрут

Танжелос

Мандарины

Помидоры

Tomatillos

Помидоры

Тропики

Трюфель

Клубни

Репа

Кресс-салат

Дикий

Дерево

Специальность по фруктам

Овощи прочие

Разное

Влияние температуры воздуха на урожайность и фитохимический состав цикория красного и хризантемы гирлянды, выращенных на заводе-заводе

  • Boo, H.О., Б.Г. Хео, С. Горинштейн, С.У. Чон. 2011. Положительное влияние температуры и условий роста на ферментативный и антиоксидантный статус растений салата. Plant Sci. 181: 479–84.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Choi, K.Y., E.Y. Ян, Д. Парк, Ю. Ким. T.C. Seo, H.K. Юн и Х. Seo. 2005. Разработка питательного раствора для гидропоники листовых овощей семейства крестоцветных на основе скорости поглощения питательных веществ и воды и соотношения катионов.J. Bio-Env. Продолж. 144: 289–297. (на корейском).

    Google ученый

  • Диксон, Р.А. и Н. Пайва. 1995. Стресс-индуцированный метаболизм фенилпропаноидов. Растительная клетка 7: 1085–1097.

    PubMed
    CAS

    Google ученый

  • Gosselin., A. and M.J. Trudel. 1986. Влияние температуры корневой зоны на перец. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 111: 220–224.

    Google ученый

  • Gutfinger, T.1981. Полифенолы оливкового масла. J. Amer. Oil Chem. Soc. 58: 966–968.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • Ingersoll, C.M., R.A. Низенбаум, К.Э.Вейгл и Дж. Х. Lehman. 2010. Общее количество фенольных соединений и отдельные фенольные кислоты меняются в зависимости от световой среды в Lindera benzoin . Ботаника 88: 1007–1010.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • Янг, Б.К., Ю.П. Hong и J.C. Chun. 1999. Влияние температуры корневой зоны гидропоники на рост растений и потребление питательных веществ овощными культурами. J. Kor. Soc. Почва. Sci. Fert. 25: 242–248.

    Google ученый

  • Янг Ю.С. 2005. Автоматическая система завода-изготовителя. Res. Ext. 46: 44–47.

    Google ученый

  • Канг, Х.М. и является. Ким. 2007. Влияние модификации состава питательного раствора на внутреннее качество некоторых листовых овощей в гидропонике.J. Bio-Env. Продолж. 16: 348–351 (на корейском языке).

    Google ученый

  • Kim, Y.B., S.S. Nam, I.H. Чой, Б. Джонг и С.Дж. Чанг. 2002. Влияние переработки гидропоники и использованного субстрата на товарный урожай и качество сладкого перца. Кор. J. Hor. Sci. Technol. 20 (Дополнение II): 67. (Abstr.)

    Google ученый

  • Ли, E.H., J.W. Ли, Дж. Джи, Ю. Нам, И. Чо, Ю.С. Квон. 1996. Влияние субстратов на рост и урожайность огурцов, выращенных на гидропонике в мешочной культуре. J. Bio. Фак. Env. 5: 15–522.

    Google ученый

  • Lee, J.G., S.S. Oh, S.H. Ча, Ю.А. Янг, С.Ю. Ким, Ю. Эм, и С. Чеонг. 2010. Влияние соотношения красного / синего света и кратковременного преобразования качества света на рост и содержание антоцианов в молодом листовом салате. J. Bio-Env. Продолж. 19: 351–359. (на корейском языке)

    Google ученый

  • Ли Ю.Б., Ю. Джин, С.С. Джо и К.Э. Ли. 2000. Производство салата в заводской системе производства. Кор. J. Hort. Sci. Technol. 18: 178. (Abstr.)

    Google ученый

  • Морено, M.I.N., M.I. Исла, А. Сампьетро и М.А.Ваттуоне. 2000. Сравнение активности прополиса по улавливанию свободных радикалов из нескольких регионов Аргентины. J. Ethnopharmacol. 71: 109–114.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Ой, М.М., Х.Н. Трюк и К.Б. Раджашекар. 2009. Вторичный метаболизм и антиоксиданты участвуют в адаптации к окружающей среде и стрессоустойчивости салата-латука. J. Plant Physiol. 166: 180–191.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Park, K.W., M.H. Чан, Дж. Х. Вон и К. Jang. 1995. Схема роста китайских листовых овощей в зависимости от температуры питательного раствора. J. Kor. Soc. Hort. Sci. 36: 608–613.

    Google ученый

  • Парк, Дж.Э., Я. Парк, Б. Чон и С.Дж. Хван. 2012. Рост и содержание антоцианов в салате под воздействием искусственного источника света и фотопериода в производственной системе закрытого типа. Кор. J. Hort. Sci. Technol. 30: 673–679.

    CAS

    Google ученый

  • Раджашекар, Си Би, Э. Э. Кэри, Х. Чжао и М. Ой. 2009. Фитохимические вещества, способствующие укреплению здоровья, в фруктах и ​​овощах: влияние абиотических стрессов и методов растениеводства. Functional Plant Sci.Biotechnol. 3: 30–38.

    Google ученый

  • Раскин Л., Д.М. Рыбницкий, С. Комарницкий, Н. Ллиц, А. Пулев, Н. Борисюк, А. Бринкер, Д.А. Морено, К. Риполл, Н. Якоби, Дж. М. О’Нил, Т. Корнуэлл, Л. Пастор и Б. Фридлендер. 2002. Растения и здоровье человека в ХХI веке. Trends Biotechnol. 20: 522–531.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Сео, Т.К., Х.К. Юн и Ч. Чжан. 2006. Влияние добавления поверхностно-активного вещества на абсорбцию Ge и рост пак-чоя и салата в культуре DFT. J. Bio-Env. Продолж. 15: 130–135. (на корейском языке)

    Google ученый

  • Сын, К.Х., Дж. Х. Парк, Д. Ким, М. Ой. 2012. Индекс формы листа, рост и фитохимические вещества у двух сортов листового салата, выращенных под монохроматическими светодиодами. Кор. J. Hort. Sci. Technol. 30: 664–672.

    CAS

    Google ученый

  • Um, Y.К., С.С. О, Дж. Дж. Ли, С.Ю. Ким, Ю.А. Jang. 2010. Развитие завода по выращиванию контейнерных растений и выращивание листовых овощей под воздействием различных источников света. J. Bio-Env. Продолж. 19: 333–342. (на корейском языке)

    Google ученый

  • Wang, S.Y. и В. Чжэн. 2001. Влияние температуры роста растений на антиоксидантную способность клубники. J. Agric. Food Chem. 49: 4977–4982.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Юнь, Х.К., Ч. Чжан, Т. Сео и Дж. Ли. 2006. Влияние концентрации и периодов внесения селена на рост чеснока. J. Bio-Env. Продолж. 15: 346–351. (на корейском языке)

    Google ученый

  • Производство маннита с высоким выходом с помощью Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 из гидролизата инулина, полученного из цикория | Журнал промышленной микробиологии и биотехнологии

    Абстрактные

    Цикорий — это сельскохозяйственное растение со значительным потенциалом в качестве углеводного субстрата для недорогого производства биохимических препаратов.В данной работе было исследовано производство маннита Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 из гидролизата инулина, полученного из цикория. Первоначально процесс биоконверсии пострадал из-за утечки фруктозы по фосфокетолазному пути, что привело к низкому выходу маннита. Когда гидролизат инулина был дополнен глюкозой в качестве субстрата для производства маннита в сочетании со стратегиями индукции аэрации и индуцированной никотиновой кислотой окислительно-восстановительной модуляции, выход маннита значительно улучшился.В этих условиях наблюдалось значительное улучшение скорости потребления глюкозы, внутриклеточных уровней НАДН и удельной активности маннитолдегидрогеназы, при этом продукция маннита увеличивалась с 64,6 до 88,1 г / л, а общий выход увеличивался с 0,69 до 0,94 г / г. Эта работа продемонстрировала эффективный метод производства маннита из гидролизата инулина с высоким общим выходом.

    Введение

    Маннитол представляет собой сахарный спирт C6, полученный из фруктозы, со многими желательными свойствами, такими как относительно низкий гликемический индекс, практически неканцерогенный эффект и отсутствие реакции с активными компонентами лекарственных препаратов [14].В связи с его широким применением в пищевой промышленности и фармацевтических продуктах, маннит в настоящее время химически синтезируется в больших масштабах, при котором гидрогенизация под высоким давлением равных молей фруктозы и глюкозы инкубируется в диапазоне температур 120–160 ° C [19 ]. Продукты этого процесса гидрирования состоят приблизительно из 25% маннита и 75% сорбита, что указывает на то, что только половина исходной фруктозы превращается в маннит, а остальная часть превращается в побочный продукт сорбита.Кроме того, этот процесс сталкивается с трудностями при отделении маннита от сорбита, что приводит к еще более высоким производственным затратам и снижению выхода [19].

    Гетероферментативные молочнокислые бактерии, такие как Lactobacillus fermentum , Lactobacillus intermediateus и Leuconostoc mesenteroides , могут специфически продуцировать маннит из фруктозы без образования побочного продукта сорбита [18, 25, 26]. Таким образом, производство маннита посредством микробной ферментации стало эффективным методом снижения стоимости производства маннита [8, 13, 22, 24].Во время этого процесса биопродукции фруктоза используется в качестве акцептора электронов, который восстанавливается до маннита за счет внутриклеточного НАДН, процесс, катализируемый маннитолдегидрогеназой (МДГ) (EC 1.1.1.67) (рис. 1). Восстанавливающий эквивалент НАДН образуется путем превращения одной трети фруктозы в уксусную кислоту через фосфокетолазный (ПК) путь, что приводит к теоретическому максимальному выходу маннита 0,67 г / г при использовании фруктозы в качестве единственного источника углерода. Хотя микробная ферментация позволяет избежать образования сорбита, метаболизм фруктозы через PK-путь приводит к низкому выходу маннита, что снижает его конкурентоспособность по сравнению с химическим методом.Для увеличения выхода маннита вместо фруктозы следует использовать другие источники углерода. Использование сельскохозяйственных культур, содержащих как фруктозу, так и глюкозу, для микробного производства маннита стало важным аспектом повышения урожайности маннита и снижения производственных затрат [15]. Яблочный сок кешью, содержащий почти равное количество фруктозы и глюкозы, использовался в качестве субстрата для ферментации маннита [4, 23]. По внутриклеточному окислительно-восстановительному балансу оптимальное соотношение глюкозы и фруктозы равно 0.5; таким образом, необходимо добавить дополнительную фруктозу для увеличения производства маннита, что считается неэкономичным из-за высокой стоимости фруктозы. Инулин — это углевод, который хранится в корнях и стеблях цикория, который является альтернативным сырьем для производства химикатов при ферментации подходящими микроорганизмами [20]. Инулин состоит из линейных цепей d-фруктозы, и каждая цепь оканчивается остатком d-глюкозы; Следовательно, высокое содержание фруктозы в инулине делает его привлекательным материалом для микробиологического производства маннита.Однако сообщалось о низком выходе маннита (0,57 г / г), полученном из гидролизата инулина, который в основном был вызван утечкой фруктозы по пути ПК [15]. Таким образом, добавление дополнительной глюкозы в гидролизат инулина может быть потенциальным методом поддержки роста клеток и снижения метаболизма фруктозы через PK-путь, тем самым увеличивая выход маннита.

    Рис. 1

    Метаболический путь штамма L. pseudomesenteroides для продукции маннита. ( 1 глюкозокиназа, 2 фруктокиназа, 3 маннитолдегидрогеназа, 4 фосфоглюкомутаза)

    Рис.1

    Метаболический путь штамма L. pseudomesenteroides для продукции маннита. ( 1 глюкозокиназа, 2 фруктокиназа, 3 маннитолдегидрогеназа, 4 фосфоглюкомутаза)

    Производство уксусной кислоты через PK-путь генерирует большое количество NADH, что заставляет клетки выполнять внутриклеточный окислительно-восстановительный баланс производство, поскольку преобразование фруктозы в маннитол связано с регенерацией NAD + .Следовательно, низкий уровень внутриклеточного НАДН сдвигает метаболический поток в сторону синтеза маннита. Сообщалось, что концентрация внутриклеточного NAD (H) может быть увеличена путем добавления никотиновой кислоты (NA) в среду для ферментации, поскольку NAD + может быть получен из предшественника NA с потреблением АТФ и α-d- 5-фосфорибозил-1-пирофосфат [11]. Потенциальное использование никотиновой кислоты для модуляции окислительно-восстановительного потенциала привлекло большое внимание, особенно в восстанавливающих продуктах.Сообщалось, что во время роста штамма Clostridium добавление NA значительно увеличивало уровень внутриклеточного NADH и последующую продукцию бутанола на 84 и 50% соответственно [10]. Следовательно, другим возможным способом достижения высокого выхода маннита является направление потока фруктозы на путь синтеза маннита путем запуска восстанавливающей силы за счет увеличения доступности НАДН.

    Чтобы сделать процесс биопроизводства маннита более экономичным, критически важен высокий выход маннита.В этом исследовании мы попытались получить маннит из гидролизата инулина, полученного из цикория, с высоким выходом. Гидролизат инулина с добавкой глюкозы использовался для снижения метаболизма фруктозы через PK-путь. Клетки, индуцированные различными условиями аэрации, были протестированы для улучшения потребления глюкозы и дальнейшего уменьшения утечки фруктозы. Кроме того, впервые была проведена индуцированная никотиновой кислотой окислительно-восстановительная модуляция для повышения выхода маннита.

    Материалы и методы

    Сырье

    Инулин, полученный из цикория, был поставлен Qinghai Weide Biotech Co., Ltd. (Цинхай, Китай). Гидролизат инулина готовили с использованием 50 мМ серной кислоты и нагревали в автоклаве при 121 ° C в течение 15 мин. PH гидролизата инулина доводили до 7,0 с помощью 4 М NaOH для использования в качестве субстрата для производства маннита.

    Приготовление посевных материалов

    Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 (№ CCTCC2014115) был проверен в нашей лаборатории и сохранен в 15% глицерине при -80 ° C. Клетки активно выращивали в анаэробных флаконах емкостью 200 мл, содержащих упрощенную среду MRS, состоящую из 10 г / л пептона, 5 г / л дрожжевого экстракта, 2 г / л цитрата аммония, 0.1 г / л сульфата магния, 0,05 г / л сульфата марганца, 2 г / л фосфата динатрия и 30 г / л глюкозы в качестве источника углерода при конечном pH 6,5. Культуру инокулировали при 30 ° C на роторном шейкере (200 об / мин) в течение 12 ч, а затем использовали в качестве посевной культуры. При исследовании влияния различных условий аэрации на потребление глюкозы клетки культивировали в течение длительного периода 30 часов. Мы исследовали влияние различных условий аэрации на потребление глюкозы в процессе культивирования семян. Анаэробные условия были достигнуты путем барботирования газообразного азота через производственную среду.Скорость аэрации поддерживалась на уровне 0,05 об / мин для условий микроаэрации и 0,5 об / мин для условий с хорошей аэрацией.

    Эксперименты по ферментации

    Производство маннита при периодической ферментации проводили в ферментере на 3 л с рабочим объемом 2 л (Bioflo 110, США). Ферментацию проводили при 30 ° C со скоростью перемешивания 200 об / мин. Упрощенная производственная среда, описанная Саха, была использована для экономичного производства маннита [16]. Этот производственный носитель состоит из 0.033 г / л сульфата марганца, 5 г / л соевого пептона и 50 г / л кукурузного настоя. Гидролизат инулина использовался как дешевый субстрат для производства маннита. К гидролизату инулина добавляли концентрированный раствор глюкозы с концентрацией 600 г / л для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Начальный pH был установлен на уровне 7,0, и ферментация проводилась без регулирования pH до тех пор, пока pH не достиг 5,5, после чего к культуре добавляли 2 M NaOH для поддержания pH выше 5,5. NA в конечных концентрациях 5, 50 и 100 мг / л добавляли в начале периодической ферментации.Все ферментации проводили в двух экземплярах. Отфильтрованный газообразный азот барботировали через производственную среду в течение 10 мин для поддержания анаэробных условий после инокуляции 200 мл активно растущих клеток. Образцы отбирали через равные промежутки времени для анализа плотности клеток, потребления сахара и продуктов.

    Аналитические методы

    Рост клеток определяли путем измерения оптической плотности разбавленного соответствующим образом ферментационного бульона при 600 нм.Сахара и продукты анализировали с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Фруктозу, глюкозу и маннит измеряли с помощью колонки BP-100 Pb ++ . Температуру поддерживали на уровне 80 ° C, а в качестве элюента использовали сверхчистую воду со скоростью потока 0,6 мл / мин. Для анализов молочной кислоты, этанола и уксусной кислоты использовали колонку Aminex HPX-87H (300 мм × 7,8 мм). Температуру колонки поддерживали на уровне 65 ° C, и в качестве подвижной фазы использовали 5 мМ H 2 SO 4 со скоростью потока 0.6 мл / мин. Время удерживания глюкозы, фруктозы, маннита, молочной кислоты, уксусной кислоты составляло 20,05, 27,83, 42,35, 6,24 и 5,44 мин соответственно. Внутриклеточные концентрации НАДН и НАД + определяли с помощью метода циклических измерений [10]. Обычно 1 мл культурального бульона из каждого условия быстро отбирали в две микроцентрифужные пробирки для экстракции NADH и NAD + . Пробирки центрифугировали при 15000 об / мин в течение 1 мин для сбора клеток, после чего 300 мкл 0.2 М NaOH или 0,2 М HCl использовали для ресуспендирования клеток для экстракции НАДН или НАД + соответственно. Образцы нагревали при 50 ° C в течение 10 мин, а затем охлаждали до 0 ° C. Лизаты клеток нейтрализовали добавлением по каплям 300 мкл 0,1 М HCl или 0,1 М NaOH к экстрактам NADH или NAD + соответственно. Затем микроцентрифужные пробирки центрифугировали при 15000 об / мин в течение 5 минут и собирали супернатанты. Концентрации NADH или NAD + в супернатантах определяли с использованием метода анализа с циклическим ферментным циклом.Готовили смесь, содержащую равные объемы 1,0 М бицинового буфера (pH 8,0), абсолютного этанола, 40 мМ ЭДТА (pH 8,0), 4,2 мМ МТТ и вдвое большего количества 16,6 мМ PES, и помещали на водяную баню при 30 ° C на 10 мин. Реакции проводили в кювете и содержали 50 мкл экстракта, 0,3 мл чистой воды, 0,6 мл смеси и 50 мкл алкогольдегидрогеназы (500 Ед / мл) в общем объеме 1 мл. Реакцию начинали, когда добавляли алкогольдегидрогеназу, и сразу же определяли оптическую плотность при 570 нм с помощью спектрофотометра UV-Vis в течение 3 мин.Определяли титры NADH и NAD + в супернатантах и ​​рассчитывали внутриклеточное содержание на грамм клеток, сравнивая наклоны оптической плотности со временем реакции со стандартными кривыми. Анализы MDH выполняли, как описано ранее [8]. Концентрации белка определяли, как описано ранее [2]. Выход маннита рассчитывали исходя из потребленной фруктозы. Все анализы были выполнены в трех экземплярах.

    Результаты и обсуждение

    Производство маннита по

    л.pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина

    Использование дешевого сырья для производства биохимических продуктов стало привлекательным подходом в промышленной микробной ферментации [9, 21, 24, 28]. Инулин, полученный из цикория, состоит из линейных цепей β (2 → 1) связанных звеньев d-фруктозы и концевых остатков d-глюкозы, которые не могут быть напрямую использованы в качестве субстратов для микробной ферментации [23]. В настоящем исследовании инулин, полученный из цикория, сначала был гидролизован до моносахаридов разбавленной серной кислотой, в результате чего была получена сахарная смесь с общим содержанием сахаров 112 г / л, включая 99.3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Фруктоза в гидролизате инулина составляет 88,7% от общего количества полученных сахаров, что делает его экономически целесообразным для производства маннита. Периодическую ферментацию с помощью L. pseudomesenteroides CCTCC G123 проводили для получения маннита с использованием гидролизата инулина в качестве источника углерода (рис. 2а). Упрощенная среда, описанная Саха, была использована для дальнейшего снижения стоимости [17]. L. pseudomesenteroides CCTCC G123 вырос до плотности клеток (OD 600 ) 2.24 через 40 ч и оставался стабильным до конца ферментации. Глюкоза истощалась после 16 часов ферментации со скоростью потребления 0,46 г / (л ч), в то время как фруктоза потреблялась с более высокой скоростью 1,79 г / (л ч). Основными продуктами пути ПК L. pseudomesenteroides CCTCC G123 являются молочная и уксусная кислоты. Сообщалось, что L. pseudomesenteroides продуцирует смесь d- и l-молочных кислот [12], в то время как в нашем исследовании 23,5 г / л d-молочной кислоты было произведено L.pseudomesenteroides CCTCC G123 с оптической чистотой 99,9%. Производство уксусной кислоты было сравнимо с молочной кислотой из-за классического гетеролактического брожения (рис. 1). Этанол почти не производился, потому что дополнительный АТФ может быть получен путем производства ацетата, который гораздо более полезен для роста клеток. Большой пул НАДН был образован одновременно с образованием кислот. В этих условиях фруктоза восстанавливается до маннита за счет НАДН для пополнения внутриклеточного пула НАД + .Концентрация маннита достигла максимального уровня 64,6 г / л с выходом 0,69 г / г и производительностью 1,24 г / (л · ч). Выход маннита был немного выше, чем при использовании фруктозы в качестве единственного источника углерода. Когда глюкоза была исчерпана, остаточная фруктоза служила субстратом для пути PK и акцептором электронов, что означает, что одна треть остаточной фруктозы была направлена ​​в путь PK для поддержки роста клеток и выработки NADH. Следовательно, соотношение глюкозы и фруктозы 0.13 в гидролизате инулина не подходит для получения маннита с высоким выходом.

    Рис. 2

    a Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина. Полученный из цикория инулин был гидролизован разбавленной серной кислотой, и гидролизат состоит из 112 г / л общих сахаров, включая 99,3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Данные выражены в виде средних значений ± стандартное отклонение. b Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина с добавкой глюкозы.Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов

    Рис. 2

    a Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина. Полученный из цикория инулин был гидролизован разбавленной серной кислотой, и гидролизат состоит из 112 г / л общих сахаров, включая 99,3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Данные выражены в виде средних значений ± стандартное отклонение. b Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина с добавкой глюкозы. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Согласно окислительно-восстановительному балансу метаболического пути L. pseudomesenteroides (рис. 1), один моль глюкозы может генерировать два моля НАДН и производство одного моля маннита. требуется один моль НАДН, предполагая, что один моль глюкозы может поддерживать полное превращение двух молей фруктозы в маннит.Таким образом, необходимо обеспечить дополнительную глюкозу, чтобы избежать попадания фруктозы в путь PK. Имея это в виду, концентрированный раствор глюкозы был добавлен к гидролизату инулина для достижения соотношения глюкоза / фруктоза 0,5, и было исследовано его влияние на производство маннита (рис. 2b). В этих условиях клетки потребляли сахар быстрее, чем при использовании одного гидролизата инулина: 20,1 г / л глюкозы и 91,2 г / л фруктозы потреблялись через 48 часов. Получают 70,6 г / л маннита с выходом 0.77 г / г. По сравнению с ферментацией без добавления глюкозы концентрация и выход маннита увеличились на 9,3 и 11,6% соответственно. Добавление глюкозы в гидролизат инулина также увеличивало продуктивность маннита с 1,24 г / (л ч) до 1,47 г / (л ч). Хотя добавление глюкозы к гидролизату инулина увеличивало выход маннита из фруктозы, этот процесс все еще страдал от утечки фруктозы в путь PK. Было показано, что мутант гена фруктокиназы L. pseudomesenteroides ATCC12291 ( fruK ) демонстрирует повышенный выход маннита с 0.От 73 до 0,86 г / г [6]; однако полное превращение фруктозы в маннит штаммом Leuconostoc не было достигнуто до сих пор, что позволяет предположить, что L. pseudomesenteroides предпочитает использовать фруктозу, а не глюкозу при культивировании в среде, одновременно снабжаемой двумя сахарами. Сообщалось, что максимальная удельная скорость роста L. mesenteroides NRRLB-1299, культивируемых в среде на основе глюкозы, была на 40% ниже, чем в среде на основе глюкозы / фруктозы [5], что позволяет предположить, что способность к более низкому потреблению глюкозы у штамм, продуцирующий маннит, может вызывать утечку фруктозы в путь PK.Следовательно, повышение способности к потреблению глюкозы казалось вероятным альтернативным методом увеличения выхода маннита.

    Производство маннита из гидролизата цикория в условиях аэрации

    Концентрация кислорода является важным параметром для использования субстрата и накопления продукта. На скорость использования субстрата и биосинтез поли (ε-l-лизина) влиял кислород во время культивирования Streptomyces noursei NRRL 5126 [1].Сообщалось, что потребление глюкозы штаммом Leuconostoc в аэробных условиях было более быстрым, чем в анаэробных условиях [3], в то время как производство маннита в анаэробных условиях было в 1,98 раза выше, чем в аэробных условиях, что указывает на то, что двухэтапный процесс ферментации будет быть полезным для производства маннита. Чтобы улучшить способность потребления глюкозы L. pseudomesenteroides CCTCC G123, мы исследовали влияние различных условий аэрации на его способность потреблять глюкозу в процессе культивирования семян (рис.3). По сравнению с неаэрированными условиями, аэрированные посевные культуры (как микроаэрированные, так и хорошо аэрированные) успешно увеличивали скорость потребления глюкозы L. pseudomesenteroides CCTCC G123 во время анаэробной ферментации. Скорость потребления глюкозы 0,97 г / (л ч) была достигнута в условиях хорошей аэрации, в то время как полученная в условиях без аэрации и микроаэрации составила 0,43 г / (л ч) и 0,53 г / (л ч), соответственно. Норма потребления глюкозы в условиях хорошей вентиляции составила 125.На 6 и 83% выше, чем в безаэрированном и микроаэрированном состояниях соответственно. Для увеличения выхода маннита клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированных условиях, использовали в качестве посевного материала. Гидролизат цикория с добавлением глюкозы (соотношение глюкоза / фруктоза 0,5) использовали в качестве субстрата для ферментации маннита в анаэробных условиях (рис. 4). Клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированном состоянии, показали высокий уровень потребления глюкозы 0,78 г / (л · ч), что составляет 69.На 6% выше, чем в неиндуцированных клетках. Кроме того, скорость потребления фруктозы увеличилась с 1,9 до 2,3 г / (л · ч). С улучшенным потреблением глюкозы и фруктозы ферментация произвела 77,8 г / л маннита с превосходным выходом 0,84 г / г, сравнимым с выходом L. pseudomesenteroides ATCC12291, который имеет пониженную активность фруктокиназы [6].

    Рис. 3

    Влияние различных условий аэрации во время процесса культивирования семян на способность потреблять глюкозу в анаэробных условиях.Стерильный кислород и бескислородный азот использовали для поддержания условий ферментации. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов.

    Рис. 3

    Влияние различных условий аэрации во время процесса культивирования семян на способность потребления глюкозы в анаэробных условиях. Стерильный кислород и бескислородный азот использовали для поддержания условий ферментации. Каждое значение является средним для трех параллельных повторов

    Рис. 4

    Производство маннита л.pseudomesenteroides CCTCC G123, индуцированный условиями хорошей аэрации. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов.

    Рис. 4

    Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123, вызванное условиями вентиляции в скважине. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза, равного 0.5. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Редокс-модуляция, индуцированная никотиновой кислотой, для продукции маннита

    L. pseudomesenteroides CCTCC G123

    Пара кофакторов NAD + и NADH играет важную роль в большом количестве биохимических реакций и, таким образом, стала привлекательной внутриклеточной мишенью для индукции метаболических изменений [27]. В условиях анаэробного роста регенерация NAD + достигается с использованием NADH для уменьшения метаболических промежуточных продуктов, в то время как в течение L.pseudomesenteroides ферментация, окисление НАДН фруктозой катализируется МДГ. Производство маннита с высоким выходом требует достаточного количества НАДН, чтобы направить поток фруктозы по пути синтеза маннита. Таким образом, мы предположили, что повышение внутриклеточного уровня НАДН может дополнительно увеличить выход маннита, который является НАДН-зависимым продуктом. Таким образом, мы исследовали возможность увеличения доступности NADH путем добавления в культуру NA для управления внутриклеточным пулом NADH и увеличения выхода маннита (Таблица 1).Начальные концентрации глюкозы и фруктозы поддерживались на уровне 47,4 и 94,1 г / л соответственно. Определено влияние НА на уровень внутриклеточного НАД (Н) и удельную активность НАДН-зависимого МДГ (рис. 5). Клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированных условиях, использовали в качестве посевного материала. В целом, добавление NA значительно увеличивало общий уровень NAD (H). Результаты показали, что оптимальная доза NA составляет 50 мг / л, при которой уровни концентрации NADH и общего NAD (H) увеличиваются 3.16 и 2,79 раза соответственно. Дальнейшее увеличение дозировки NA не привело к явному улучшению уровня NAD (H). Соотношение НАДН / НАД во время ферментации с 5 мг / л NA оставалось постоянным по сравнению с ферментацией без NA. Однако это соотношение увеличивалось с 1,03 до 1,35 при более высоких дозах 50 и 100 мг / л NA, указывая на то, что больше восстанавливающих эквивалентов было произведено в форме NADH. Удельная активность МДГ постоянно возрастает с увеличением внутриклеточного уровня НАДН. Максимальная удельная активность МДГ достигала 0.249 Ед / мг, что в 3,5 раза выше, чем в контрольной группе.

    Сравнение производства маннита с добавкой никотиновой кислоты и без нее

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93.7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,08 3,57 ± 0,06
    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80.5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,02 3,74 ± 0,08

    100 мг / л никотиновой кислоты 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    Сравнение производства маннитола

    с никотиновой кислотой и без нее

    2,777 ± 0,05 50 мг / л никотиновая кислота

    5 ± 0,9

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1.1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 30,6 ± 0,2 92,5 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02
    47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,541 93,0 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    9892

    Влияние NA на внутриклеточный уровень NAD (H) и удельную активность NADH-зависимого MDH. NA с конечной концентрацией 5, 50, 100 мМ добавляли в начале периодической ферментации. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Рис.5

    Влияние NA на внутриклеточный уровень NAD (H) и удельную активность NADH-зависимого MDH. NA с конечной концентрацией 5, 50, 100 мМ добавляли в начале периодической ферментации. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов.

    Относительно низкая продукция маннита наблюдалась в отсутствие NA, тогда как концентрация маннита увеличивалась с увеличением концентрации NA в ферментационной среде. Когда в культуру добавляли 50 мг / л NA, продукция маннита была максимальной (88.1 г / л), что на 15,3% выше, чем в контрольной группе (отсутствие НА). Выход маннита увеличился до высокого уровня 0,94 г / г, что указывает на то, что только следовые количества фруктозы направляются в путь PK. Кроме того, добавление 50 мг / л NA значительно увеличивало продуктивность маннита до 3,74 г / (л · ч), что на 62,6% выше, чем без добавления NA. Сформированная нами стратегия увеличивает выход маннита до 0,94 г / г, что почти на 50% выше, чем полученный в чистой фруктозной среде без какой-либо стратегии контроля.Высокий выход маннита может значительно снизить стоимость производства, а без образования сорбита этот процесс будет более рентабельным. Сравнение результатов производства маннита приведено в таблице 2. Производство маннита с помощью L. intermediateus B-3693 с использованием фруктозы в качестве единственного источника углерода может достичь теоретического выхода 0,67 г / г [7], тогда как при производстве глюкозы и фруктозы используются одновременно, выход маннита отличается от используемого штамма [6, 11]. При использовании 100 г / л фруктозы и 50 г / л глюкозы Lactobacillus sp.B001 продуцировал только 65 г / л маннита, и не наблюдалось явного увеличения выхода маннита, что позволяет предположить, что уровень потребления глюкозы может быть ограничивающим фактором. В настоящей работе ферментация L. pseudomesenteroides G123, индуцированная глюкозой в хорошо аэрированных условиях, показала высокую скорость потребления глюкозы. Это изменение метаболического потока значительно увеличило выход маннита до 0,84 г / г, что было сравнимо с максимальным выходом L. pseudomesenteroides BPT143, сообщенным Helanto et al.[6]. Однако производительность маннита составляла всего 2,3 г / (л · ч), что было недостаточно для повышения эффективности процесса. Добавление NA к ферментационной среде привело к значительному улучшению внутриклеточного уровня NADH и удельной активности MDH. Ферментация маннита с индуцированной никотиновой кислотой окислительно-восстановительной модуляцией дополнительно направила поток фруктозы на производство маннита, что привело к наивысшему выходу маннита у штамма L. pseudomesenteroides , о котором сообщалось на сегодняшний день.Кроме того, производительность маннита также значительно увеличилась до 3,74 г / (л · ч), что значительно повысило эффективность этого процесса. Результаты показали, что окислительно-восстановительная модуляция путем добавления NA является эффективным методом получения маннита с высоким выходом.

    Сравнение продукции маннита разными штаммами

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0.02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    908rc

    F084086

    Штамм
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC 12291 2,8 [6]
    L. pseudomesenteroides G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 This work Glc / Frc / NA c 88,1 0,94 3,74 Эта работа
    Напряжение
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0.65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC 12291 20 г / л Frc NA 0,86 2,8 L. G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides G123 NAc6 906.1 0,94 3,74 Эта работа

    Сравнение продукции маннита разными штаммами

    908rc

    ATCC

    NA 2,840

    Штамм
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    Л.промежуточный B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    Lactobacillus sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC [6]
    L.pseudomesenteroides G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides

    L. 3,74 Эта работа
    6.

    Helanto

    M

    ,

    Aarnikunnas

    J

    ,

    Weymarn

    N

    ,

    Airaksinen

    U

    ,

    Palva

    A

    Произведено Legend

    ,

    Legend мутант Leuconostoc pseudomesenteroides

    J Biotechnol

    2005

    116

    283

    294

    7.

    Itoh Y, Tanaka A, Araya H, Ogasawara K, Inabi Lactob6 для

    H (1992) маннит, уксусная кислота и молочная кислота.Европейский патент

    8.

    Kaup

    B

    ,

    Bringer-Meyer

    S

    ,

    Sahm

    H

    Образование d-маннита из d-глюкозы в биотрансформации цельноклеточных клеток23 906 с рекомбинантными бактериями

    Appl Microbiol Biotechnol

    2005

    69

    397

    403

    9.

    Kádár

    Z

    ,

    Szengyel

    Z

    ,

    9000 Réczey промышленных отходов производства этанола

    Ind Crop Prod

    2004

    20

    103

    110

    10.

    Li

    T

    ,

    Yan

    Y

    ,

    He

    J

    Восстановительные кофакторы способствуют увеличению производства бутанола диким типом Clostridium sp. штамм BOh4

    Bioresour Technol

    2014

    155

    220

    228

    11.

    Ma

    J

    ,

    Gou

    D

    ,

    Liang

    000

    000 Liang

    L

    Chen

    X

    ,

    Zhang

    C

    ,

    Jiang

    M

    Повышение выработки сукцината с помощью метаболической инженерии Escherichia coli с коэкспрессией никотиновой кислоты, фосфоробоксилата 9000, фосфоробоксилата 9000, никотиновой кислоты, 9000, карбоксилтрафафосфата, никотиновой кислоты, 9000

    2013

    97

    6739

    6747

    12.

    Parmentier

    S

    ,

    Arnaut

    F

    ,

    Soetaert

    W

    ,

    Vandamme

    EJ

    Ферментативное производство d-маннитол-азенто-бензо-гидрогеназ 6 маннитол-гидродезен-фосфидосоединение с системой регенерации азентозитолида маннитола с помощью Lean

    Биокатальный биотрансформ

    2005

    23

    1

    7

    13.

    Расин

    FM

    ,

    Saha

    BC

    BC

    Производство маннитола Lusobac6, питающегося 9024, маннитола, 36 периодическая и непрерывная ферментация с рециркуляцией клеток

    Process Biochem

    2007

    42

    1609

    1613

    14.

    Saha

    BC

    ,

    Racine

    FM

    Биотехнологическое производство маннита и его применение

    Appl Microbiol Biotechnol

    2011

    89

    879

    ha

    Производство маннита из инулина путем одновременного ферментативного осахаривания и ферментации с использованием Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    Enzyme Microb Technol

    2006

    39

    991

    995

    16.

    Saha

    BC

    Недорогая среда для производства маннита с помощью Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    Appl Microbiol Biotechnol

    2006

    72

    676

    676

    BC

    Влияние солевых питательных веществ на производство маннита Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    J Ind Microbiol Biotechnol

    2006

    33

    887

    890

    18.

    Saha

    BC

    ,

    Nakamura

    LK

    Производство маннита и молочной кислоты путем ферментации с Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    0002 Biotechnol Bioeng

    000

    000

    000

    000

    000

    000

    000

    000 19.

    Song

    SH

    ,

    Vieille

    C

    Последние достижения в области биологического производства маннита

    Appl Microbiol Biotechnol

    2009

    84

    55

    200002 62.

    Sarchami

    T

    ,

    Rehmann

    L

    Оптимизация ферментативного гидролиза инулина из клубней топинамбура для производства ферментативного бутанола

    Biomass Bioenergy

    2014

    000 692 Santos

    JRA

    ,

    Lucena

    MS

    ,

    Gusmão

    NB

    ,

    Gouveia

    ER

    Оптимизация производства этанола за счет одновременной ферментации Saccharomyces

    000 и обезвоживания сахаросодержащих сахаров2000 в мешочках EDFA Ind Crops Prod

    2012

    36

    584

    588

    22.

    Rywińska

    A

    ,

    Marcinkiewicz

    M

    ,

    Cibis

    E

    ,

    Rymowicz

    W

    Оптимизация состава среды на основе

    Оптимизация состава среды для получения поверхности с глицеритролом

    Lip24 на основе глицерита 60002 Prep Biochem Biotechnol

    2015

    45

    515

    529

    23.

    Rakicka

    M

    ,

    Lazar

    Z

    ,

    Rywińska

    000

    A инулина и глицерина в качестве субстратов ферментации при производстве эритрита и лимонной кислоты с использованием Yarrowia lipolytica , экспрессирующей инулиназу

    Chem Pap

    2016

    70

    1452

    1459

    24.

    Tomaszewska

    L

    ,

    Rywińska

    A

    ,

    Gładkowski

    W

    Производство эритрита и маннита с помощью 90techn23 Yarrowia 9000 Bio2000

    9biastoltica

    в среде, содержащей липолит 9000 Yarrowia lipolytica 9000 9000 9000 9

    1333

    1343

    342429025.

    Von Weymarn

    N

    ,

    Hujanen

    M

    ,

    Leisola

    M

    Производство d-маннитивных бактерий 9000 9000 Лактофосфат 9000 2

    37

    1207

    1213

    26.

    Von Weymarn

    N

    ,

    Kiviharju

    K

    ,

    Leisola

    M

    Высокоуровневое производство d-маннита с помощью биореактора с рециркуляцией мембранных клеток

    J Ind Microbiol

    44

    49

    27.

    Wang

    Y

    ,

    San

    K

    ,

    Bennett

    GN

    Разработка кофакторов для развития химической биотехнологии

    ol 2013

    ol 9000 Opin

    994

    999

    28.

    Wu

    X

    ,

    Staggenborg

    S

    ,

    Propheter

    JL

    ,

    Руни

    WL

    ,

    Yu

    J

    ,

    Yu

    J

    ,

    Wang

    000 сока сладкого и сока их эффективность при ферментации этанола

    Ind Crop Prod

    2010

    31

    164

    170

    © Общество промышленной микробиологии, 2017

    Получение высокого выхода маннита Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 из цикорий-производного гидролизата инулина | Журнал промышленной микробиологии и биотехнологии

    Абстрактные

    Цикорий — это сельскохозяйственное растение со значительным потенциалом в качестве углеводного субстрата для недорогого производства биохимических препаратов.В данной работе было исследовано производство маннита Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 из гидролизата инулина, полученного из цикория. Первоначально процесс биоконверсии пострадал из-за утечки фруктозы по фосфокетолазному пути, что привело к низкому выходу маннита. Когда гидролизат инулина был дополнен глюкозой в качестве субстрата для производства маннита в сочетании со стратегиями индукции аэрации и индуцированной никотиновой кислотой окислительно-восстановительной модуляции, выход маннита значительно улучшился.В этих условиях наблюдалось значительное улучшение скорости потребления глюкозы, внутриклеточных уровней НАДН и удельной активности маннитолдегидрогеназы, при этом продукция маннита увеличивалась с 64,6 до 88,1 г / л, а общий выход увеличивался с 0,69 до 0,94 г / г. Эта работа продемонстрировала эффективный метод производства маннита из гидролизата инулина с высоким общим выходом.

    Введение

    Маннитол представляет собой сахарный спирт C6, полученный из фруктозы, со многими желательными свойствами, такими как относительно низкий гликемический индекс, практически неканцерогенный эффект и отсутствие реакции с активными компонентами лекарственных препаратов [14].В связи с его широким применением в пищевой промышленности и фармацевтических продуктах, маннит в настоящее время химически синтезируется в больших масштабах, при котором гидрогенизация под высоким давлением равных молей фруктозы и глюкозы инкубируется в диапазоне температур 120–160 ° C [19 ]. Продукты этого процесса гидрирования состоят приблизительно из 25% маннита и 75% сорбита, что указывает на то, что только половина исходной фруктозы превращается в маннит, а остальная часть превращается в побочный продукт сорбита.Кроме того, этот процесс сталкивается с трудностями при отделении маннита от сорбита, что приводит к еще более высоким производственным затратам и снижению выхода [19].

    Гетероферментативные молочнокислые бактерии, такие как Lactobacillus fermentum , Lactobacillus intermediateus и Leuconostoc mesenteroides , могут специфически продуцировать маннит из фруктозы без образования побочного продукта сорбита [18, 25, 26]. Таким образом, производство маннита посредством микробной ферментации стало эффективным методом снижения стоимости производства маннита [8, 13, 22, 24].Во время этого процесса биопродукции фруктоза используется в качестве акцептора электронов, который восстанавливается до маннита за счет внутриклеточного НАДН, процесс, катализируемый маннитолдегидрогеназой (МДГ) (EC 1.1.1.67) (рис. 1). Восстанавливающий эквивалент НАДН образуется путем превращения одной трети фруктозы в уксусную кислоту через фосфокетолазный (ПК) путь, что приводит к теоретическому максимальному выходу маннита 0,67 г / г при использовании фруктозы в качестве единственного источника углерода. Хотя микробная ферментация позволяет избежать образования сорбита, метаболизм фруктозы через PK-путь приводит к низкому выходу маннита, что снижает его конкурентоспособность по сравнению с химическим методом.Для увеличения выхода маннита вместо фруктозы следует использовать другие источники углерода. Использование сельскохозяйственных культур, содержащих как фруктозу, так и глюкозу, для микробного производства маннита стало важным аспектом повышения урожайности маннита и снижения производственных затрат [15]. Яблочный сок кешью, содержащий почти равное количество фруктозы и глюкозы, использовался в качестве субстрата для ферментации маннита [4, 23]. По внутриклеточному окислительно-восстановительному балансу оптимальное соотношение глюкозы и фруктозы равно 0.5; таким образом, необходимо добавить дополнительную фруктозу для увеличения производства маннита, что считается неэкономичным из-за высокой стоимости фруктозы. Инулин — это углевод, который хранится в корнях и стеблях цикория, который является альтернативным сырьем для производства химикатов при ферментации подходящими микроорганизмами [20]. Инулин состоит из линейных цепей d-фруктозы, и каждая цепь оканчивается остатком d-глюкозы; Следовательно, высокое содержание фруктозы в инулине делает его привлекательным материалом для микробиологического производства маннита.Однако сообщалось о низком выходе маннита (0,57 г / г), полученном из гидролизата инулина, который в основном был вызван утечкой фруктозы по пути ПК [15]. Таким образом, добавление дополнительной глюкозы в гидролизат инулина может быть потенциальным методом поддержки роста клеток и снижения метаболизма фруктозы через PK-путь, тем самым увеличивая выход маннита.

    Рис. 1

    Метаболический путь штамма L. pseudomesenteroides для продукции маннита. ( 1 глюкозокиназа, 2 фруктокиназа, 3 маннитолдегидрогеназа, 4 фосфоглюкомутаза)

    Рис.1

    Метаболический путь штамма L. pseudomesenteroides для продукции маннита. ( 1 глюкозокиназа, 2 фруктокиназа, 3 маннитолдегидрогеназа, 4 фосфоглюкомутаза)

    Производство уксусной кислоты через PK-путь генерирует большое количество NADH, что заставляет клетки выполнять внутриклеточный окислительно-восстановительный баланс производство, поскольку преобразование фруктозы в маннитол связано с регенерацией NAD + .Следовательно, низкий уровень внутриклеточного НАДН сдвигает метаболический поток в сторону синтеза маннита. Сообщалось, что концентрация внутриклеточного NAD (H) может быть увеличена путем добавления никотиновой кислоты (NA) в среду для ферментации, поскольку NAD + может быть получен из предшественника NA с потреблением АТФ и α-d- 5-фосфорибозил-1-пирофосфат [11]. Потенциальное использование никотиновой кислоты для модуляции окислительно-восстановительного потенциала привлекло большое внимание, особенно в восстанавливающих продуктах.Сообщалось, что во время роста штамма Clostridium добавление NA значительно увеличивало уровень внутриклеточного NADH и последующую продукцию бутанола на 84 и 50% соответственно [10]. Следовательно, другим возможным способом достижения высокого выхода маннита является направление потока фруктозы на путь синтеза маннита путем запуска восстанавливающей силы за счет увеличения доступности НАДН.

    Чтобы сделать процесс биопроизводства маннита более экономичным, критически важен высокий выход маннита.В этом исследовании мы попытались получить маннит из гидролизата инулина, полученного из цикория, с высоким выходом. Гидролизат инулина с добавкой глюкозы использовался для снижения метаболизма фруктозы через PK-путь. Клетки, индуцированные различными условиями аэрации, были протестированы для улучшения потребления глюкозы и дальнейшего уменьшения утечки фруктозы. Кроме того, впервые была проведена индуцированная никотиновой кислотой окислительно-восстановительная модуляция для повышения выхода маннита.

    Материалы и методы

    Сырье

    Инулин, полученный из цикория, был поставлен Qinghai Weide Biotech Co., Ltd. (Цинхай, Китай). Гидролизат инулина готовили с использованием 50 мМ серной кислоты и нагревали в автоклаве при 121 ° C в течение 15 мин. PH гидролизата инулина доводили до 7,0 с помощью 4 М NaOH для использования в качестве субстрата для производства маннита.

    Приготовление посевных материалов

    Leuconostoc pseudomesenteroides CTCC G123 (№ CCTCC2014115) был проверен в нашей лаборатории и сохранен в 15% глицерине при -80 ° C. Клетки активно выращивали в анаэробных флаконах емкостью 200 мл, содержащих упрощенную среду MRS, состоящую из 10 г / л пептона, 5 г / л дрожжевого экстракта, 2 г / л цитрата аммония, 0.1 г / л сульфата магния, 0,05 г / л сульфата марганца, 2 г / л фосфата динатрия и 30 г / л глюкозы в качестве источника углерода при конечном pH 6,5. Культуру инокулировали при 30 ° C на роторном шейкере (200 об / мин) в течение 12 ч, а затем использовали в качестве посевной культуры. При исследовании влияния различных условий аэрации на потребление глюкозы клетки культивировали в течение длительного периода 30 часов. Мы исследовали влияние различных условий аэрации на потребление глюкозы в процессе культивирования семян. Анаэробные условия были достигнуты путем барботирования газообразного азота через производственную среду.Скорость аэрации поддерживалась на уровне 0,05 об / мин для условий микроаэрации и 0,5 об / мин для условий с хорошей аэрацией.

    Эксперименты по ферментации

    Производство маннита при периодической ферментации проводили в ферментере на 3 л с рабочим объемом 2 л (Bioflo 110, США). Ферментацию проводили при 30 ° C со скоростью перемешивания 200 об / мин. Упрощенная производственная среда, описанная Саха, была использована для экономичного производства маннита [16]. Этот производственный носитель состоит из 0.033 г / л сульфата марганца, 5 г / л соевого пептона и 50 г / л кукурузного настоя. Гидролизат инулина использовался как дешевый субстрат для производства маннита. К гидролизату инулина добавляли концентрированный раствор глюкозы с концентрацией 600 г / л для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Начальный pH был установлен на уровне 7,0, и ферментация проводилась без регулирования pH до тех пор, пока pH не достиг 5,5, после чего к культуре добавляли 2 M NaOH для поддержания pH выше 5,5. NA в конечных концентрациях 5, 50 и 100 мг / л добавляли в начале периодической ферментации.Все ферментации проводили в двух экземплярах. Отфильтрованный газообразный азот барботировали через производственную среду в течение 10 мин для поддержания анаэробных условий после инокуляции 200 мл активно растущих клеток. Образцы отбирали через равные промежутки времени для анализа плотности клеток, потребления сахара и продуктов.

    Аналитические методы

    Рост клеток определяли путем измерения оптической плотности разбавленного соответствующим образом ферментационного бульона при 600 нм.Сахара и продукты анализировали с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Фруктозу, глюкозу и маннит измеряли с помощью колонки BP-100 Pb ++ . Температуру поддерживали на уровне 80 ° C, а в качестве элюента использовали сверхчистую воду со скоростью потока 0,6 мл / мин. Для анализов молочной кислоты, этанола и уксусной кислоты использовали колонку Aminex HPX-87H (300 мм × 7,8 мм). Температуру колонки поддерживали на уровне 65 ° C, и в качестве подвижной фазы использовали 5 мМ H 2 SO 4 со скоростью потока 0.6 мл / мин. Время удерживания глюкозы, фруктозы, маннита, молочной кислоты, уксусной кислоты составляло 20,05, 27,83, 42,35, 6,24 и 5,44 мин соответственно. Внутриклеточные концентрации НАДН и НАД + определяли с помощью метода циклических измерений [10]. Обычно 1 мл культурального бульона из каждого условия быстро отбирали в две микроцентрифужные пробирки для экстракции NADH и NAD + . Пробирки центрифугировали при 15000 об / мин в течение 1 мин для сбора клеток, после чего 300 мкл 0.2 М NaOH или 0,2 М HCl использовали для ресуспендирования клеток для экстракции НАДН или НАД + соответственно. Образцы нагревали при 50 ° C в течение 10 мин, а затем охлаждали до 0 ° C. Лизаты клеток нейтрализовали добавлением по каплям 300 мкл 0,1 М HCl или 0,1 М NaOH к экстрактам NADH или NAD + соответственно. Затем микроцентрифужные пробирки центрифугировали при 15000 об / мин в течение 5 минут и собирали супернатанты. Концентрации NADH или NAD + в супернатантах определяли с использованием метода анализа с циклическим ферментным циклом.Готовили смесь, содержащую равные объемы 1,0 М бицинового буфера (pH 8,0), абсолютного этанола, 40 мМ ЭДТА (pH 8,0), 4,2 мМ МТТ и вдвое большего количества 16,6 мМ PES, и помещали на водяную баню при 30 ° C на 10 мин. Реакции проводили в кювете и содержали 50 мкл экстракта, 0,3 мл чистой воды, 0,6 мл смеси и 50 мкл алкогольдегидрогеназы (500 Ед / мл) в общем объеме 1 мл. Реакцию начинали, когда добавляли алкогольдегидрогеназу, и сразу же определяли оптическую плотность при 570 нм с помощью спектрофотометра UV-Vis в течение 3 мин.Определяли титры NADH и NAD + в супернатантах и ​​рассчитывали внутриклеточное содержание на грамм клеток, сравнивая наклоны оптической плотности со временем реакции со стандартными кривыми. Анализы MDH выполняли, как описано ранее [8]. Концентрации белка определяли, как описано ранее [2]. Выход маннита рассчитывали исходя из потребленной фруктозы. Все анализы были выполнены в трех экземплярах.

    Результаты и обсуждение

    Производство маннита по

    л.pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина

    Использование дешевого сырья для производства биохимических продуктов стало привлекательным подходом в промышленной микробной ферментации [9, 21, 24, 28]. Инулин, полученный из цикория, состоит из линейных цепей β (2 → 1) связанных звеньев d-фруктозы и концевых остатков d-глюкозы, которые не могут быть напрямую использованы в качестве субстратов для микробной ферментации [23]. В настоящем исследовании инулин, полученный из цикория, сначала был гидролизован до моносахаридов разбавленной серной кислотой, в результате чего была получена сахарная смесь с общим содержанием сахаров 112 г / л, включая 99.3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Фруктоза в гидролизате инулина составляет 88,7% от общего количества полученных сахаров, что делает его экономически целесообразным для производства маннита. Периодическую ферментацию с помощью L. pseudomesenteroides CCTCC G123 проводили для получения маннита с использованием гидролизата инулина в качестве источника углерода (рис. 2а). Упрощенная среда, описанная Саха, была использована для дальнейшего снижения стоимости [17]. L. pseudomesenteroides CCTCC G123 вырос до плотности клеток (OD 600 ) 2.24 через 40 ч и оставался стабильным до конца ферментации. Глюкоза истощалась после 16 часов ферментации со скоростью потребления 0,46 г / (л ч), в то время как фруктоза потреблялась с более высокой скоростью 1,79 г / (л ч). Основными продуктами пути ПК L. pseudomesenteroides CCTCC G123 являются молочная и уксусная кислоты. Сообщалось, что L. pseudomesenteroides продуцирует смесь d- и l-молочных кислот [12], в то время как в нашем исследовании 23,5 г / л d-молочной кислоты было произведено L.pseudomesenteroides CCTCC G123 с оптической чистотой 99,9%. Производство уксусной кислоты было сравнимо с молочной кислотой из-за классического гетеролактического брожения (рис. 1). Этанол почти не производился, потому что дополнительный АТФ может быть получен путем производства ацетата, который гораздо более полезен для роста клеток. Большой пул НАДН был образован одновременно с образованием кислот. В этих условиях фруктоза восстанавливается до маннита за счет НАДН для пополнения внутриклеточного пула НАД + .Концентрация маннита достигла максимального уровня 64,6 г / л с выходом 0,69 г / г и производительностью 1,24 г / (л · ч). Выход маннита был немного выше, чем при использовании фруктозы в качестве единственного источника углерода. Когда глюкоза была исчерпана, остаточная фруктоза служила субстратом для пути PK и акцептором электронов, что означает, что одна треть остаточной фруктозы была направлена ​​в путь PK для поддержки роста клеток и выработки NADH. Следовательно, соотношение глюкозы и фруктозы 0.13 в гидролизате инулина не подходит для получения маннита с высоким выходом.

    Рис. 2

    a Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина. Полученный из цикория инулин был гидролизован разбавленной серной кислотой, и гидролизат состоит из 112 г / л общих сахаров, включая 99,3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Данные выражены в виде средних значений ± стандартное отклонение. b Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина с добавкой глюкозы.Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов

    Рис. 2

    a Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина. Полученный из цикория инулин был гидролизован разбавленной серной кислотой, и гидролизат состоит из 112 г / л общих сахаров, включая 99,3 г / л фруктозы и 12,7 г / л глюкозы. Данные выражены в виде средних значений ± стандартное отклонение. b Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123 из гидролизата инулина с добавкой глюкозы. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Согласно окислительно-восстановительному балансу метаболического пути L. pseudomesenteroides (рис. 1), один моль глюкозы может генерировать два моля НАДН и производство одного моля маннита. требуется один моль НАДН, предполагая, что один моль глюкозы может поддерживать полное превращение двух молей фруктозы в маннит.Таким образом, необходимо обеспечить дополнительную глюкозу, чтобы избежать попадания фруктозы в путь PK. Имея это в виду, концентрированный раствор глюкозы был добавлен к гидролизату инулина для достижения соотношения глюкоза / фруктоза 0,5, и было исследовано его влияние на производство маннита (рис. 2b). В этих условиях клетки потребляли сахар быстрее, чем при использовании одного гидролизата инулина: 20,1 г / л глюкозы и 91,2 г / л фруктозы потреблялись через 48 часов. Получают 70,6 г / л маннита с выходом 0.77 г / г. По сравнению с ферментацией без добавления глюкозы концентрация и выход маннита увеличились на 9,3 и 11,6% соответственно. Добавление глюкозы в гидролизат инулина также увеличивало продуктивность маннита с 1,24 г / (л ч) до 1,47 г / (л ч). Хотя добавление глюкозы к гидролизату инулина увеличивало выход маннита из фруктозы, этот процесс все еще страдал от утечки фруктозы в путь PK. Было показано, что мутант гена фруктокиназы L. pseudomesenteroides ATCC12291 ( fruK ) демонстрирует повышенный выход маннита с 0.От 73 до 0,86 г / г [6]; однако полное превращение фруктозы в маннит штаммом Leuconostoc не было достигнуто до сих пор, что позволяет предположить, что L. pseudomesenteroides предпочитает использовать фруктозу, а не глюкозу при культивировании в среде, одновременно снабжаемой двумя сахарами. Сообщалось, что максимальная удельная скорость роста L. mesenteroides NRRLB-1299, культивируемых в среде на основе глюкозы, была на 40% ниже, чем в среде на основе глюкозы / фруктозы [5], что позволяет предположить, что способность к более низкому потреблению глюкозы у штамм, продуцирующий маннит, может вызывать утечку фруктозы в путь PK.Следовательно, повышение способности к потреблению глюкозы казалось вероятным альтернативным методом увеличения выхода маннита.

    Производство маннита из гидролизата цикория в условиях аэрации

    Концентрация кислорода является важным параметром для использования субстрата и накопления продукта. На скорость использования субстрата и биосинтез поли (ε-l-лизина) влиял кислород во время культивирования Streptomyces noursei NRRL 5126 [1].Сообщалось, что потребление глюкозы штаммом Leuconostoc в аэробных условиях было более быстрым, чем в анаэробных условиях [3], в то время как производство маннита в анаэробных условиях было в 1,98 раза выше, чем в аэробных условиях, что указывает на то, что двухэтапный процесс ферментации будет быть полезным для производства маннита. Чтобы улучшить способность потребления глюкозы L. pseudomesenteroides CCTCC G123, мы исследовали влияние различных условий аэрации на его способность потреблять глюкозу в процессе культивирования семян (рис.3). По сравнению с неаэрированными условиями, аэрированные посевные культуры (как микроаэрированные, так и хорошо аэрированные) успешно увеличивали скорость потребления глюкозы L. pseudomesenteroides CCTCC G123 во время анаэробной ферментации. Скорость потребления глюкозы 0,97 г / (л ч) была достигнута в условиях хорошей аэрации, в то время как полученная в условиях без аэрации и микроаэрации составила 0,43 г / (л ч) и 0,53 г / (л ч), соответственно. Норма потребления глюкозы в условиях хорошей вентиляции составила 125.На 6 и 83% выше, чем в безаэрированном и микроаэрированном состояниях соответственно. Для увеличения выхода маннита клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированных условиях, использовали в качестве посевного материала. Гидролизат цикория с добавлением глюкозы (соотношение глюкоза / фруктоза 0,5) использовали в качестве субстрата для ферментации маннита в анаэробных условиях (рис. 4). Клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированном состоянии, показали высокий уровень потребления глюкозы 0,78 г / (л · ч), что составляет 69.На 6% выше, чем в неиндуцированных клетках. Кроме того, скорость потребления фруктозы увеличилась с 1,9 до 2,3 г / (л · ч). С улучшенным потреблением глюкозы и фруктозы ферментация произвела 77,8 г / л маннита с превосходным выходом 0,84 г / г, сравнимым с выходом L. pseudomesenteroides ATCC12291, который имеет пониженную активность фруктокиназы [6].

    Рис. 3

    Влияние различных условий аэрации во время процесса культивирования семян на способность потреблять глюкозу в анаэробных условиях.Стерильный кислород и бескислородный азот использовали для поддержания условий ферментации. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов.

    Рис. 3

    Влияние различных условий аэрации во время процесса культивирования семян на способность потребления глюкозы в анаэробных условиях. Стерильный кислород и бескислородный азот использовали для поддержания условий ферментации. Каждое значение является средним для трех параллельных повторов

    Рис. 4

    Производство маннита л.pseudomesenteroides CCTCC G123, индуцированный условиями хорошей аэрации. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза 0,5. Каждое значение является средним из трех параллельных повторов.

    Рис. 4

    Производство маннита L. pseudomesenteroides CCTCC G123, вызванное условиями вентиляции в скважине. Концентрированный раствор глюкозы 600 г / л добавляли к гидролизату инулина для получения желаемого соотношения глюкоза / фруктоза, равного 0.5. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Редокс-модуляция, индуцированная никотиновой кислотой, для продукции маннита

    L. pseudomesenteroides CCTCC G123

    Пара кофакторов NAD + и NADH играет важную роль в большом количестве биохимических реакций и, таким образом, стала привлекательной внутриклеточной мишенью для индукции метаболических изменений [27]. В условиях анаэробного роста регенерация NAD + достигается с использованием NADH для уменьшения метаболических промежуточных продуктов, в то время как в течение L.pseudomesenteroides ферментация, окисление НАДН фруктозой катализируется МДГ. Производство маннита с высоким выходом требует достаточного количества НАДН, чтобы направить поток фруктозы по пути синтеза маннита. Таким образом, мы предположили, что повышение внутриклеточного уровня НАДН может дополнительно увеличить выход маннита, который является НАДН-зависимым продуктом. Таким образом, мы исследовали возможность увеличения доступности NADH путем добавления в культуру NA для управления внутриклеточным пулом NADH и увеличения выхода маннита (Таблица 1).Начальные концентрации глюкозы и фруктозы поддерживались на уровне 47,4 и 94,1 г / л соответственно. Определено влияние НА на уровень внутриклеточного НАД (Н) и удельную активность НАДН-зависимого МДГ (рис. 5). Клетки, индуцированные глюкозой в хорошо аэрированных условиях, использовали в качестве посевного материала. В целом, добавление NA значительно увеличивало общий уровень NAD (H). Результаты показали, что оптимальная доза NA составляет 50 мг / л, при которой уровни концентрации NADH и общего NAD (H) увеличиваются 3.16 и 2,79 раза соответственно. Дальнейшее увеличение дозировки NA не привело к явному улучшению уровня NAD (H). Соотношение НАДН / НАД во время ферментации с 5 мг / л NA оставалось постоянным по сравнению с ферментацией без NA. Однако это соотношение увеличивалось с 1,03 до 1,35 при более высоких дозах 50 и 100 мг / л NA, указывая на то, что больше восстанавливающих эквивалентов было произведено в форме NADH. Удельная активность МДГ постоянно возрастает с увеличением внутриклеточного уровня НАДН. Максимальная удельная активность МДГ достигала 0.249 Ед / мг, что в 3,5 раза выше, чем в контрольной группе.

    Сравнение производства маннита с добавкой никотиновой кислоты и без нее

    Деформация
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L.pseudomesenteroides ATCC 12291 20 г / л Frc NA 0,86 2,8 [6]
    L. псевдомезентероиды G1241 G123 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides G123 Glc / Frc / NA c 88,1 0,94 3,74 6 Эта работа

    Производство маннита гетероферментативными молочнокислыми бактериями исторически страдало от низких урожаев.Повышение скорости потребления глюкозы и внутриклеточного уровня НАДН рассматривалось как потенциальный метод получения высоких выходов маннита. Комбинированные стратегии индукции аэрации и окислительно-восстановительной модуляции значительно увеличили скорость потребления глюкозы, уровень внутриклеточного НАДН и удельную активность МДГ, что привело к увеличению продукции маннита с 64,6 до 88,1 г / л с увеличением выхода с 0,69 до 0,94 г / л. грамм. Результаты этой работы могут быть полезны при разработке эффективной стратегии получения маннита с высоким выходом.

    Благодарности

    Эта работа была поддержана проектом, финансируемым Приоритетной академической программой развития провинции Цзянсу, ключевым научно-техническим проектом провинции Цзянсу (BE2016389), ключевой лабораторией Цзянсу по экологическому топливу и химическим веществам на основе биомассы (JSBEM2016010), Национальным природным Научный фонд Китая (213).

    Список литературы

    1.

    Bankar

    SB

    ,

    Singhal

    RS

    Улучшенный биосинтез поли-ε-лизина с использованием Streptomyces noursei 2011 NRRL 5126 путем контроля растворенного кислорода во время ферментации

    Biotechn2

    652

    658

    2.

    Bradford

    MM

    Быстрый и чувствительный метод количественного определения количества белка в микрограммах, использующий принцип связывания белок-краситель

    Anal Biochem

    1976

    72

    248

    254

    3.

    Dols

    M

    ,

    Chraibi

    W

    ,

    Remaud-Simeon

    M

    ,

    Lindley

    ND

    ,

    Monsan

    PF

    mesenos во время метаболизма различных сахаров и их последствий для производства декстрансахаразы

    Appl Environ Microbiol

    1997

    63

    2159

    2165

    1685074.

    Fontes

    CPML

    ,

    Silveira

    MS

    ,

    Guilherme

    AA

    ,

    Fernandes

    FAN

    ,

    Rodrigues

    S

    Производство дрожжевого экстракта манна сульфата манн

    сок

    Biocatal Agric Biotechnol

    2013

    2

    69

    75

    5.

    Grobben

    GJ

    ,

    Peters

    SWPG

    ,

    000 Wisselink

    Wisselink

    ,

    Wisselink

    Hoefnagel

    MHN

    ,

    Hugenholtz

    J

    ,

    Eggink

    G

    Спонтанное образование маннитол-продуцирующего варианта Leuconostoc pseudomesenteroides 2 9000, выращенного 9000 9000, 9000 Enteroides, 9000, 9000, 9000, 9000, 9000, 9000 Enseudomesenteroides.

    67

    2867

    2 870

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93.7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,08 3,57 ± 0,06
    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80.5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,02 3,74 ± 0,08

    100 мг / л никотиновой кислоты 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    Сравнение производства маннитола

    с никотиновой кислотой и без нее

    2,777 ± 0,05 50 мг / л никотиновая кислота

    5 ± 0,9

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1.1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 30,6 ± 0,2 92,5 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02
    47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0,02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,541 93,0 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    9892

    Влияние NA на внутриклеточный уровень NAD (H) и удельную активность NADH-зависимого MDH. NA с конечной концентрацией 5, 50, 100 мМ добавляли в начале периодической ферментации. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов

    Рис.5

    Влияние NA на внутриклеточный уровень NAD (H) и удельную активность NADH-зависимого MDH. NA с конечной концентрацией 5, 50, 100 мМ добавляли в начале периодической ферментации. Каждое значение представляет собой среднее значение трех параллельных повторов.

    Относительно низкая продукция маннита наблюдалась в отсутствие NA, тогда как концентрация маннита увеличивалась с увеличением концентрации NA в ферментационной среде. Когда в культуру добавляли 50 мг / л NA, продукция маннита была максимальной (88.1 г / л), что на 15,3% выше, чем в контрольной группе (отсутствие НА). Выход маннита увеличился до высокого уровня 0,94 г / г, что указывает на то, что только следовые количества фруктозы направляются в путь PK. Кроме того, добавление 50 мг / л NA значительно увеличивало продуктивность маннита до 3,74 г / (л · ч), что на 62,6% выше, чем без добавления NA. Сформированная нами стратегия увеличивает выход маннита до 0,94 г / г, что почти на 50% выше, чем полученный в чистой фруктозной среде без какой-либо стратегии контроля.Высокий выход маннита может значительно снизить стоимость производства, а без образования сорбита этот процесс будет более рентабельным. Сравнение результатов производства маннита приведено в таблице 2. Производство маннита с помощью L. intermediateus B-3693 с использованием фруктозы в качестве единственного источника углерода может достичь теоретического выхода 0,67 г / г [7], тогда как при производстве глюкозы и фруктозы используются одновременно, выход маннита отличается от используемого штамма [6, 11]. При использовании 100 г / л фруктозы и 50 г / л глюкозы Lactobacillus sp.B001 продуцировал только 65 г / л маннита, и не наблюдалось явного увеличения выхода маннита, что позволяет предположить, что уровень потребления глюкозы может быть ограничивающим фактором. В настоящей работе ферментация L. pseudomesenteroides G123, индуцированная глюкозой в хорошо аэрированных условиях, показала высокую скорость потребления глюкозы. Это изменение метаболического потока значительно увеличило выход маннита до 0,84 г / г, что было сравнимо с максимальным выходом L. pseudomesenteroides BPT143, сообщенным Helanto et al.[6]. Однако производительность маннита составляла всего 2,3 г / (л · ч), что было недостаточно для повышения эффективности процесса. Добавление NA к ферментационной среде привело к значительному улучшению внутриклеточного уровня NADH и удельной активности MDH. Ферментация маннита с индуцированной никотиновой кислотой окислительно-восстановительной модуляцией дополнительно направила поток фруктозы на производство маннита, что привело к наивысшему выходу маннита у штамма L. pseudomesenteroides , о котором сообщалось на сегодняшний день.Кроме того, производительность маннита также значительно увеличилась до 3,74 г / (л · ч), что значительно повысило эффективность этого процесса. Результаты показали, что окислительно-восстановительная модуляция путем добавления NA является эффективным методом получения маннита с высоким выходом.

    Сравнение продукции маннита разными штаммами

    . Потребление сахара
    .
    Производство маннита
    .
    Глюкоза (г / л)
    .
    Фруктоза (г / л)
    .
    Концентрация (г / л)
    .
    Выход a (г / г)
    .
    Производительность (г / (л ч))
    .
    Контроль 25,1 ± 0,6 91,0 ± 0,4 76,4 ± 1,1 0,84 ± 0,01 2,30 ± 0,02
    5 мг / л никотиновая кислота 40 90,6840 0,29 ± 0,2 80,5 ± 2,4 0,87 ± 0,02 2,77 ± 0,05
    50 мг / л никотиновая кислота 47,3 ± 0,8 93,7 ± 0,5 88,1 ± 1,5 0,94 ± 0.02 3,74 ± 0,04
    100 мг / л никотиновая кислота 46,5 ± 0,7 93,5 ± 0,9 87,9 ± 2,2 0,94 ± 0,02 3,57 ± 0,06

    908rc

    F084086

    Штамм
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC 12291 2,8 [6]
    L. pseudomesenteroides G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 This work Glc / Frc / NA c 88,1 0,94 3,74 Эта работа
    Напряжение
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0.65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC 12291 20 г / л Frc NA 0,86 2,8 L. G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides G123 NAc6 906.1 0,94 3,74 Эта работа

    Сравнение продукции маннита разными штаммами

    908rc

    ATCC

    NA 2,840

    Штамм
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    Л.промежуточный B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    Lactobacillus sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L. pseudomesenteroides ATCC [6]
    L.pseudomesenteroides G123 Glc / Frc b 77,8 0,84 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides

    L. 3,74 Эта работа
    6.

    Helanto

    M

    ,

    Aarnikunnas

    J

    ,

    Weymarn

    N

    ,

    Airaksinen

    U

    ,

    Palva

    A

    Произведено Legend

    ,

    Legend мутант Leuconostoc pseudomesenteroides

    J Biotechnol

    2005

    116

    283

    294

    7.

    Itoh Y, Tanaka A, Araya H, Ogasawara K, Inabi Lactob6 для

    H (1992) маннит, уксусная кислота и молочная кислота.Европейский патент

    8.

    Kaup

    B

    ,

    Bringer-Meyer

    S

    ,

    Sahm

    H

    Образование d-маннита из d-глюкозы в биотрансформации цельноклеточных клеток23 906 с рекомбинантными бактериями

    Appl Microbiol Biotechnol

    2005

    69

    397

    403

    9.

    Kádár

    Z

    ,

    Szengyel

    Z

    ,

    9000 Réczey промышленных отходов производства этанола

    Ind Crop Prod

    2004

    20

    103

    110

    10.

    Li

    T

    ,

    Yan

    Y

    ,

    He

    J

    Восстановительные кофакторы способствуют увеличению производства бутанола диким типом Clostridium sp. штамм BOh4

    Bioresour Technol

    2014

    155

    220

    228

    11.

    Ma

    J

    ,

    Gou

    D

    ,

    Liang

    000

    000 Liang

    L

    Chen

    X

    ,

    Zhang

    C

    ,

    Jiang

    M

    Повышение выработки сукцината с помощью метаболической инженерии Escherichia coli с коэкспрессией никотиновой кислоты, фосфоробоксилата 9000, фосфоробоксилата 9000, никотиновой кислоты, 9000, карбоксилтрафафосфата, никотиновой кислоты, 9000

    2013

    97

    6739

    6747

    12.

    Parmentier

    S

    ,

    Arnaut

    F

    ,

    Soetaert

    W

    ,

    Vandamme

    EJ

    Ферментативное производство d-маннитол-азенто-бензо-гидрогеназ 6 маннитол-гидродезен-фосфидосоединение с системой регенерации азентозитолида маннитола с помощью Lean

    Биокатальный биотрансформ

    2005

    23

    1

    7

    13.

    Расин

    FM

    ,

    Saha

    BC

    BC

    Производство маннитола Lusobac6, питающегося 9024, маннитола, 36 периодическая и непрерывная ферментация с рециркуляцией клеток

    Process Biochem

    2007

    42

    1609

    1613

    14.

    Saha

    BC

    ,

    Racine

    FM

    Биотехнологическое производство маннита и его применение

    Appl Microbiol Biotechnol

    2011

    89

    879

    ha

    Производство маннита из инулина путем одновременного ферментативного осахаривания и ферментации с использованием Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    Enzyme Microb Technol

    2006

    39

    991

    995

    16.

    Saha

    BC

    Недорогая среда для производства маннита с помощью Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    Appl Microbiol Biotechnol

    2006

    72

    676

    676

    BC

    Влияние солевых питательных веществ на производство маннита Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    J Ind Microbiol Biotechnol

    2006

    33

    887

    890

    18.

    Saha

    BC

    ,

    Nakamura

    LK

    Производство маннита и молочной кислоты путем ферментации с Lactobacillus intermediateus NRRL B-3693

    0002 Biotechnol Bioeng

    000

    000

    000

    000

    000

    000

    000

    000 19.

    Song

    SH

    ,

    Vieille

    C

    Последние достижения в области биологического производства маннита

    Appl Microbiol Biotechnol

    2009

    84

    55

    200002 62.

    Sarchami

    T

    ,

    Rehmann

    L

    Оптимизация ферментативного гидролиза инулина из клубней топинамбура для производства ферментативного бутанола

    Biomass Bioenergy

    2014

    000 692 Santos

    JRA

    ,

    Lucena

    MS

    ,

    Gusmão

    NB

    ,

    Gouveia

    ER

    Оптимизация производства этанола за счет одновременной ферментации Saccharomyces

    000 и обезвоживания сахаросодержащих сахаров2000 в мешочках EDFA Ind Crops Prod

    2012

    36

    584

    588

    22.

    Rywińska

    A

    ,

    Marcinkiewicz

    M

    ,

    Cibis

    E

    ,

    Rymowicz

    W

    Оптимизация состава среды на основе

    Оптимизация состава среды для получения поверхности с глицеритролом

    Lip24 на основе глицерита 60002 Prep Biochem Biotechnol

    2015

    45

    515

    529

    23.

    Rakicka

    M

    ,

    Lazar

    Z

    ,

    Rywińska

    000

    A инулина и глицерина в качестве субстратов ферментации при производстве эритрита и лимонной кислоты с использованием Yarrowia lipolytica , экспрессирующей инулиназу

    Chem Pap

    2016

    70

    1452

    1459

    24.

    Tomaszewska

    L

    ,

    Rywińska

    A

    ,

    Gładkowski

    W

    Производство эритрита и маннита с помощью 90techn23 Yarrowia 9000 Bio2000

    9biastoltica

    в среде, содержащей липолит 9000 Yarrowia lipolytica 9000 9000 9000 9

    1333

    1343

    342429025.

    Von Weymarn

    N

    ,

    Hujanen

    M

    ,

    Leisola

    M

    Производство d-маннитивных бактерий 9000 9000 Лактофосфат 9000 2

    37

    1207

    1213

    26.

    Von Weymarn

    N

    ,

    Kiviharju

    K

    ,

    Leisola

    M

    Высокоуровневое производство d-маннита с помощью биореактора с рециркуляцией мембранных клеток

    J Ind Microbiol

    44

    49

    27.

    Wang

    Y

    ,

    San

    K

    ,

    Bennett

    GN

    Разработка кофакторов для развития химической биотехнологии

    ol 2013

    ol 9000 Opin

    994

    999

    28.

    Wu

    X

    ,

    Staggenborg

    S

    ,

    Propheter

    JL

    ,

    Руни

    WL

    ,

    Yu

    J

    ,

    Yu

    J

    ,

    Wang

    000 сока сладкого и сока их эффективность при ферментации этанола

    Ind Crop Prod

    2010

    31

    164

    170

    © Общество промышленной микробиологии, 2017

    Цикорий уменьшает гиперурикемию за счет модуляции кишечной микробиоты и ослабления оси LPS / TLR4 у перепелов

    Основные моменты

    Перепел, индуцированный диетой с высоким содержанием пуринов, может создать стабильную модель гиперурикемии.

    Гиперурикемия может привести к повреждению кишечного барьера и почечной экскреционной функции у перепелов.

    Цикорий обладает поразительным гипоурикемическим действием и может использоваться в качестве лечебного средства.

    Цикорий может снизить уровень мочевой кислоты, регулируя флору кишечника и ослабляя ось LPS / TLR4.

    Реферат

    Предпосылки

    Диета с высоким содержанием пуринов может вызвать нарушение микробиоты кишечника, которое тесно связано с возникновением гиперурикемии (ГУА).В то же время развитие HUA часто сопровождается нарушением функции почек. Цикорий, натуральное лекарство, оказывает значительное влияние на снижение уровня мочевой кислоты. Однако остается неясным, связан ли его конкретный механизм с регуляцией микробиоты кишечника и почечного повреждения.

    Методы

    Использовали перепелов с гиперурикемией, индуцированную высокопуриновой диетой, и перепелов делили на контроль (CON), модель (MOD) и модель плюс высокие, средние и низкие дозы цикория. Урикозурический эффект оценивали путем определения уровней мочевой кислоты в сыворотке и кале.Между тем, морфология кишечника и почек наблюдалась с помощью окрашивания гематоксилином и эозином (НЕ), а экспрессия белков кишечного барьера окклюдина, клаудина-1 определялась количественной полимеразной цепной реакцией в реальном времени (КПЦР) и вестерн-блоттингом. Кроме того, латентный механизм был прояснен путем анализа ампликона 16S рРНК кишечной микробиоты и измерения изменений воспалительного ответа почек LPS / TLR4 оси с помощью вестерн-блоттинга и иммуноферментного анализа (ELISA).

    Результаты

    Результаты показали, что уровни мочевой кислоты в сыворотке крови значительно снизились, а уровни мочевой кислоты в кале заметно повысились после воздействия цикория. Кроме того, цикорий может восстанавливать повреждения слизистой оболочки кишечника и улучшать проницаемость кишечного барьера. Более того, анализ секвенирования 16S рРНК показал, что цикорий восстанавливает микробиоту кишечника за счет увеличения пробиотической флоры (Bifidobacterium, Erysipelotrichaceae) и уменьшения группы патогенных бактерий (Helicobacteraceae).Кроме того, было обнаружено, что цикорий снижает воспалительную реакцию оси LPS / TLR4 путем подавления воспалительного пути LPS и TLR4 / NF-κB в почках, тем самым способствуя выведению мочевой кислоты почками.

    Заключение

    Вмешательство цикория улучшило HUA за счет модуляции дисбаланса микробиоты кишечника и подавления воспалительной реакции оси LPS / TLR4 на модели перепелов, которая может быть многообещающим кандидатом на свойства снижения гиперурикемии.

    Ключевые слова

    Гиперурикемия

    Цикорий

    Микробиота кишечника

    Ось LPS / TLR4

    Перепел

    Рекомендуемые статьи Цитирующие статьи (0)

    Просмотреть аннотацию

    © 2020 Автор (ы).Опубликовано Elsevier Masson SAS.

    Рекомендуемые статьи

    Ссылки на статьи

    Антипаразитарная активность цикория (Cichorium intybus) и его природных биологически активных соединений в животноводстве: обзор | Паразиты и переносчики

  • 1.

    Fitzpatrick JL. Глобальная продовольственная безопасность: влияние ветеринарных паразитов и паразитологов. Vet Parasitol. 2013; 195: 233–48.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 2.

    Rist CL, Garchitorena A, Ngonghala CN, Gillespie TR, Bonds MH. Бремя паразитов домашнего скота на бедных. Trends Parasitol. 2015; 31: 527–30.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 3.

    O’Brien D, Scudamore J, Charlier J, Delavergne M. DISCONTOOLS: база данных для выявления пробелов в исследованиях вакцин, фармацевтических препаратов и средств диагностики для борьбы с инфекционными болезнями животных. BMC Vet Res. 2017; 13 (1)

  • 4.

    Шарлье Дж., Ван дер Вурт М., Кеньон Ф., Скуче П., Веркрюсс Дж. Погоня за гельминтами и их экономическое воздействие на выращиваемых жвачных животных. Trends Parasitol. 2014; 30: 361–7.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 5.

    Кеньон Ф., Хатчингс Ф., Морган-Дэвис К., ван Дейк Дж., Бартли Д. Борьба с глистами в животноводстве: наука в полевых условиях. Trends Parasitol. 2017; 33: 669–77.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 6.

    Каплан РМ. Лекарственная устойчивость нематод, имеющих ветеринарное значение: отчет о состоянии. Trends Parasitol. 2004. 20: 477–81.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 7.

    Уоллер П.Дж. Устойчивые стратегии борьбы с нематодными паразитами у жвачных животных путем управления выпасом и биологической борьбы. Anim Feed Sci Technol. 2006; 126: 277–89.

    Артикул

    Google ученый

  • 8.

    Woodgate RG, Корнелл, AJ, Сангстер, Северная Каролина. Возникновение, измерение и клинические перспективы лекарственной устойчивости у основных паразитарных гельминтов домашнего скота. В: Mayers DL, Sobel JD, Ouellette M, Kaye KS, Marchaim D, редакторы. Устойчивость к противомикробным препаратам, т. 2. Чам: Спрингер; 2017. с. 1305–26.

    Google ученый

  • 9.

    Waller PJ, Thamsborg SM. Борьба с нематодами в системах производства «зеленых» жвачных. Trends Parasitol. 2004; 20: 493–7.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 10.

    Хосте Х., Сотираки С., Мейер Х, Хекендорн Ф., Маурер В., Тамсборг С. Альтернативы синтетическим химическим противопаразитарным препаратам в органическом животноводстве в Европе. В: Bellon S, Penvern S, редакторы. Органическое земледелие, прототип устойчивого сельского хозяйства. Дордрехт: Шпрингер Нидерланды; 2014. с. 149–69.

    Google ученый

  • 11.

    Ромеро-Гонсалес Р., Гарридо Френих А, Мартинес Видаль JL. Остатки ветеринарных препаратов: противоглистные. Энцикл Food Saf. 2014; 3: 45–54.

    Артикул

    Google ученый

  • 12.

    Ладья А.Дж., Дюмон Б., Иссельштейн Дж., Осоро К., Уоллис ДеВриес М.Ф., Паренте Г. и др. Соответствие вида домашнего скота желаемым результатам для сохранения биоразнообразия пастбищ — обзор. Биол Консерв. 2004; 119: 137–50.

    Артикул

    Google ученый

  • 13.

    Eisler MC, Lee MRF, Tarlton JF, Martin GB, Beddington J, Dungait JAJ и др. Шаги к устойчивому животноводству. Природа. 2014; 507: 32–4.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 14.

    Schader C, Muller A, Scialabba NE-H, Hecht J, Isensee A, Erb K-H, et al. Влияние кормления скота кормами, менее конкурирующими с пищевыми продуктами, на устойчивость глобальной продовольственной системы. Интерфейс J R Soc. 2015; 12: 20150891.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 15.

    Thamsborg SM, Roepstorff A, Larsen M. Комплексный и биологический контроль паразитов в органических и традиционных производственных системах. Vet Parasitol. 1999; 84: 169–86.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 16.

    Thamsborg S, Roepstorff A, Nejsum P, Mejer H. Альтернативные подходы к борьбе с паразитами в животноводстве: перспективы Скандинавии и Балтии. Acta Vet Scand. 2010; 52: S27.

    PubMed Central
    Статья

    Google ученый

  • 17.

    Githiori JB, Athanasiadou S, Thamsborg SM. Использование растений в новых подходах к борьбе с гельминтами желудочно-кишечного тракта у домашнего скота с упором на мелких жвачных. Vet Parasitol. 2006; 139: 308–20.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 18.

    Атанасиаду С., Гитиори Дж., Кириазакис И. Лекарственные растения для борьбы с паразитами гельминтов: факты и вымысел. Животное. 2007; 1: 1392–400.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 19.

    Хост H, Джексон F, Атанасиаду S, Thamsborg SM, Hoskin SO. Воздействие растений, богатых танинами, на паразитических нематод у жвачных животных. Trends Parasitol. 2006; 22: 253–61.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 20.

    Хосте Х., Торрес-Акоста Дж. Ф. Дж., Сандовал-Кастро С., Мюллер-Харви И., Сотираки С., Лувандини Х и др. Танинсодержащие бобовые как модель нутрицевтиков против пищеварительных паразитов домашнего скота. Vet Parasitol.2015; 212: 5–17.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 21.

    Кайзер О., Кидерлен А., Крофт С. Натуральные продукты как противопаразитарные препараты. Parasitol Res. 2003. 90: 55–62.

    Артикул

    Google ученый

  • 22.

    Степек Г., Бенке Дж. М., Баттл Д. Д., Дуче И. Р.. Натуральные цистеиновые протеиназы растений как противоглистные средства? Trends Parasitol. 2004; 20: 322–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 23.

    Бенке Дж. М., Баттл Д. Д., Степек Г., Лоу А., Дуче И. Р.. Разработка новых глистогонных средств на основе цистеиновых протеиназ растений. Векторы паразитов. 2008; 1:29.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 24.

    Уоллер П.Дж., Бернес Дж., Тамсборг С.М., Сукура А., Рихтер С.Х., Ингебригтсен К. и др. Растения как средства дегельминтизации домашнего скота в странах Северной Европы: историческая перспектива, распространенные убеждения и перспективы на будущее.Acta Vet Scand. 2001; 42: 31–44.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 25.

    Атанасиаду С., Кириазакис И. Вторичные метаболиты растений: противопаразитарные эффекты и их роль в системах производства жвачных животных. Proc Nutr Soc. 2007; 63: 631–9.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 26.

    Sandoval-Castro CA, Torres-Acosta JFJ, Hoste H, Salem AZM, Chan-Pérez JI.Использование растительных биоактивных материалов для борьбы с гельминтами желудочно-кишечного тракта у домашнего скота. Anim Feed Sci Technol. 2012; 176: 192–201.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 27.

    Шарлье Дж., Тамсборг С.М., Бартли Д.Дж., Скуче П.Дж., Кеньон Ф., Герден Т. и др. Помните о пробелах в исследованиях по контролю желудочно-кишечных нематод сельскохозяйственных животных и свиней. Transbound Emerg Dis. 2018; 65 (Приложение 1): 217–34.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 28.

    Vercruysse J, Charlier J, Van DJ, Morgan ER, Geary T., von Samson-Himmelstjerna G и др. Борьба с гельминтозами жвачных к 2030 году. Паразитология. 2018: 1–10. https://doi.org/10.1017/S003118201700227X.

  • 29.

    Houdijk JGM, Kyriazakis I., Kidane A, Athanasiadou S. Манипулирование эпидемиологией паразитов мелких жвачных с помощью комбинации стратегий питания. Vet Parasitol. 2012; 186: 38–50.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 30.

    Høgh-Jensen H, Nielsen B, Thamsborg SM. Урожайность и качество, конкуренция и выращивание цикория на пастбищах из райграса / бобовых при различных уровнях поступления азота. Eur J Agron. 2006; 24: 247–56.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 31.

    Lucchin M, Varotto S, Barcaccia G, Цикорий PP. Эндивий. В: Prohens-Tomás J, Nuez F, редакторы. Овощи I: сложноцветные, Brassicaceae, Chenopodicaceae и Cucurbitaceae.Нью-Йорк: Спрингер; 2008. с. 3–48.

    Google ученый

  • 32.

    Hitova A, Melzig M. Cichorium intybus L. Zeitschrift für Phyther. 2014; 35: 198–202.

    Артикул

    Google ученый

  • 33.

    Street RA, Sidana J, Prinsloo G. Cichorium intybus : Традиционное использование, фитохимия, фармакология и токсикология. Evid Based Complement Alternat Med.2013; https://doi.org/10.1155/2013/579319.

  • 34.

    Rumball W. Grasslands Цикорий Пуна ( Cichorium intybus L.). New Zeal J Exp Agric. 1986; 14: 105–7.

    Артикул

    Google ученый

  • 35.

    Rumball W., Keogh R, Miller J, Claydon R. «Choice» кормовой цикорий ( Cichorium intybus L.). New Zeal J Agric Res. 2003. 46: 49–51.

    Артикул

    Google ученый

  • 36.

    Rumball W, Skipp R, Keogh R, Claydon R. Кормовой цикорий Puna II ( Cichorium intybus L.). New Zeal J Agric Res. 2003. 46: 53–5.

    Артикул

    Google ученый

  • 37.

    Li G, Kemp P. Кормовой цикорий ( Cichorium intybus L.): обзор его агрономии и животноводства. Adv Agron. 2005. 88: 187–222.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 38.

    Foster J, Clapham WM, Belesky DP, Labreveux M, Hall MH, Sanderson MA. Влияние участка выращивания на сесквитерпеновый лактонный состав кормового цикория ( Cichorium intybus L.). J. Agric Food Chem. 2006; 54: 1772–8.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 39.

    Барри Т. Кормовая ценность цикория ( Cichorium intybus ) для жвачных животных. J Agric Sci. 1998. 131: 251–257.

    Артикул

    Google ученый

  • 40.

    Белески Д.П., Тернер К.Э., Феддерс Дж. М., Ракл Дж. М.. Минеральный состав трав, содержащих цикорий кормовой. Агрон Дж. 2001; 93: 468–75.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 41.

    Фрейзер Т., Косгроув Дж., Томас В., Стивенс Д., Хики М. Производительность цикория пуна с лугов. Proc New Zeal Grassl Assoc. 1988. 49: 193–6.

    Google ученый

  • 42.

    Кларк Д., Андерсон К., Хунвен Г.Прирост живой массы и потребление фризских быков, пасущихся цикорием «Grasslands Puna» ( Cichorium intybus L.) или пастбищах. New Zeal J Agric Res. 1990; 33: 219–24.

    Артикул

    Google ученый

  • 43.

    Хоскин С.О., Барри Т.Н., Уилсон ПР, Чарльстон ВАГ, Кемп ПД. Рост и производство туши молодняка выращиваемого на фермах оленя, пасущего суллу ( Hedysarum coronarium ), цикория ( Cichorium intybus ) или райграса многолетнего ( Lolium perenne ) клевера белого ( Trifolium repens ).New Zeal J Agric Res. 1999; 42: 83–92.

    Артикул

    Google ученый

  • 44.

    Кидане А., Сёргейм К., Эйк Л.О., Стейнсхамн Х. Рост и химический состав цикория и характеристики цикория, пасущего ягнята, по сравнению с травяно-клеверными смесями. Acta Agr Scand A-An. 2014; 64: 233–42.

    CAS

    Google ученый

  • 45.

    Чапман Д., Тармарадж Дж., Не З. Потенциал молочной продуктивности различных видов травостоя в умеренных климатических условиях на юге Австралии.Травяной корм Sci. 2008; 63: 221–33.

    Артикул

    Google ученый

  • 46.

    Woodward SL, Waugh CD, Roach CG, Fynn D, Phillips J. Являются ли смеси разнообразных видов лучшими пастбищами для молочного животноводства? Proc New Zeal Grassl Assoc. 2013; 75: 79–84.

    Google ученый

  • 47.

    Мьюир С., Уорд Дж., Джейкобс Дж. Производство молока и состав коров в середине лактации, потребляющих многолетние рационы на основе райграса и цикория.J Dairy Sci. 2014; 97: 1005–15.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 48.

    Ди Григоли А., Тодаро М., Ди Мичели Дж., Дженна В., Торнамбе Дж., Аликата М.Л. и др. Влияние непрерывного и чередующего выпаса различных кормовых пород на молочную продуктивность овец. Small Rumin Res. 2012; 106: S29–36.

    Артикул

    Google ученый

  • 49.

    Весы GH, Knight TL, Saville DJ.Влияние вида трав и уровня питания на внутренних паразитов и продуктивность пасущихся ягнят. New Zeal J Agric Res. 1995; 38: 237–47.

    Артикул

    Google ученый

  • 50.

    Марли К.Л., Кук Р., Китинг Р., Барретт Дж., Лампкин Н. Влияние трилистника птичьей лапки ( Lotus corniculatus ) и цикория ( Cichorium intybus ) на интенсивность паразита и продуктивность ягнят, естественно инфицированных гельминты-паразиты.Vet Parasitol. 2003; 112: 147–55.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 51.

    Афанасиаду С., Цамалукас О., Кириазакис И., Джексон Ф., Куп Р.Л. Тестирование прямого антигельминтного действия биоактивных кормов против Trichostrongylus colubriformis у пасущихся овец. Vet Parasitol. 2005; 127: 233–43.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 52.

    Tzamaloukas O, Athanasiadou S, Kyriazakis I, Jackson F, Coop RL. Последствия кратковременного выпаса биоактивных кормов на укоренившиеся популяции взрослых и поступающих личинок Teladorsagia Circmincta у ягнят. Int J Parasitol. 2005. 35: 329–35.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 53.

    Хекендорн Ф., Херинг Д.А., Маурер В., Сенн М., Герцберг Х. Индивидуальное введение трех дубильных кормовых растений ягнятам, искусственно зараженным с помощью Haemonchus contortus и Cooperia curticei .Vet Parasitol. 2007. 146: 123–34.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 54.

    Кидане А., Худийк Дж.Г.М., Атанасиаду С., Толкамп Б.Дж., Кириазакис И. Влияние белкового питания матери и последующего выпаса цикория ( Cichorium intybus ) на паразитизм и продуктивность ягнят. J Anim Sci. 2010; 88: 1513–21.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 55.

    Миллер М.С., Дакетт СК, Андрэ Дж. Влияние кормовых видов на продуктивность и инфекцию желудочно-кишечных нематод у ягнят. Small Rumin Res. 2011; 95: 188–92.

    Артикул

    Google ученый

  • 56.

    Peña-Espinoza M, Thamsborg SM, Desrues O, Hansen TVA, Enemark HL. Антигельминтные эффекты кормового цикория ( Cichorium intybus ) против паразитов желудочно-кишечных нематод у экспериментально зараженного крупного рогатого скота. Паразитология.2016; 143: 1279–93.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 57.

    Нильсен Б.К., Тамсборг С.М., Хансен Х., Ранвиг Х., Хег-Йенсен Х. Влияние включения цикория в многолетний райграс-белый клевер на продуктивность и здоровье органических ягнят. Livest Sci. 2009; 125: 66–73.

    Артикул

    Google ученый

  • 58.

    Марли К.Л., Фичан Р., Дэвис Дж., Сколлан Н., Ричардсон Р., Теобальд В. и др.Влияние цикория / многолетнего райграса по сравнению с многолетним райграсом на продуктивность и качество туши пастбищных бычков. PLoS One. 2014; 9: e86259.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 59.

    Низен Дж., Вагхорн Т.С., Рауфаут К., Робертсон Х.А., Макфарлейн Р.Г. Прибавка в весе ягненка и подсчет фекальных яиц при выпасе одной из семи трав и дозировании личинок в течение шести недель. Proc New Zeal Soc Anim Prod.1994; 54: 15–8.

    Google ученый

  • 60.

    Хоскин С.О., Барри Т.Н., Уилсон П.Р., Чарльстон В.А.Г., Ходжсон Дж. Влияние снижения количества антигельминтных средств на рост и количество фекальных яиц и личинок у молодых выращиваемых оленей, пасущихся цикорий ( Cichorium intybus ) и райграс многолетний (райграс многолетний). Lolium perenne ) / клевер белый ( Trifolium repens ) пастбище. J Agric Sci. 1999; 132: 335–45.

    Артикул

    Google ученый

  • 61.

    Tzamaloukas O, Athanasiadou S, Kyriazakis I, Huntley JF, Jackson F. Влияние цикория ( Cichorium intybus ) и суллы ( Hedysarum coronarium ) на развитие личинок и реакции клеток слизистой оболочки растущих телесных клеток ягненка , зараженных телесными клетками agia . Паразитология. 2006; 132: 419–26.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 62.

    Атанасиаду С., Грей Д., Юни Д., Цамалукас О., Джексон Ф., Кириазакис И.Использование цикория для борьбы с паразитами у органических овец и их ягнят. Паразитология. 2007. 134: 299–307.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 63.

    Мосс Р.А., Власов А. Влияние видов трав на популяции желудочно-кишечных аскарид и их распространение. New Zeal J Agric Res. 1993; 36: 371–5.

    Артикул

    Google ученый

  • 64.

    Niezen JH, Charleston WAG, Hodgson J, Miller CM, Waghorn TS, Robertson HA.Влияние видов растений на личинок желудочно-кишечных нематод, паразитирующих на овцах. Int J Parasitol. 1998. 28: 791–803.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 65.

    Марли К.Л., Кук Р., Барретт Дж., Китиндж Р., Лэмпкин Н.Х. Влияние трилистника птичьей лапки ( Lotus corniculatus ) и цикория ( Cichorium intybus ) по сравнению с райграсом многолетним ( Lolium perenne ) на развитие, выживаемость и миграцию паразитов желудочно-кишечного тракта овец.Vet Parasitol. 2006. 138: 280–90.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 66.

    Джексон Ф.С., Макнабб В.С., Барри Т.Н., Фу Ю.Л., Петерс Дж. С.. Содержание конденсированного танина в ряде кормов для субтропических и умеренных широт и реакционная способность конденсированного таннина с белком рибулоза-1,5-бис-фосфаткарбоксилаза (Рубиско). J Sci Food Agric. 1996; 72: 483–92.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 67.

    Ломбарди Д., Вассер Э., Бертьям Р., Де Вриз Т. Дж., Бержерон Р. Кормовые предпочтения и добровольное потребление корма дойными коровами: влияние сохранения и времени сбора трилистника птичьего лапа и цикория. J Dairy Sci. 2015; 98: 7238–47.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 68.

    Рис С., Харборн Дж. Роль сесквитерпеновых лактонов и фенолов в химической защите цикория. Фитохимия. 1985; 24: 2225–31.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 69.

    Peters AM, van Amerongen A. Исследование влияния предварительной обработки образцов на количество сесквитерпеновых лактонов, обнаруженных в цикории ( Cichorium intybus L.), с помощью ELISA и HPLC. Zeitschrift für Leb und Forsch. 1997; 204: 189–93.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 70.

    Kisiel W, Zielin K. Гуаянолиды из Cichorium intybus и структурная ревизия сесквитерпеновых лактонов Cichorium .Фитохимия. 2001; 57: 523–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 71.

    Зидорн С. Сесквитерпеновые лактоны и их предшественники в качестве хемосистематических маркеров в трибе Cichorieae Asteraceae. Фитохимия. 2008; 69: 2270–96.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 72.

    Бишофф Т.А., Келли С.Дж., Карчеси Ю., Лаурантос М., Нгуен-Динь П., Арефи АГ.Противомалярийная активность лактуцина и лактукопикрина: сесквитерпеновые лактоны, выделенные из Cichorium intybus L. J. Ethnopharmacol. 2004; 95: 455–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 73.

    Фериоли Ф., Манко М., Д’Антуоно Л. Изменение содержания сесквитерпенового лактона и фенолов в цикории и зародышевой плазме эндивий. J Food Compos Anal. 2015; 39: 77–86.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 74.

    Папетти А., Майетта М., Корана Ф, Маррубини Дж., Газзани Г. Полифенольный профиль итальянских салатов с зелеными / красными пятнами Cichorium intybus по данным RP-HPLC-PDA-ESI-MSn. J Food Compos Anal. 2017; 63: 189–97.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 75.

    Cavin C, Delannoy M, Malnoe A, Debefve E, Touché A, Courtois D, et al. Подавление экспрессии и активности циклооксигеназы-2 экстрактом цикория. Biochem Biophys Res Commun.2005; 327: 742–9.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 76.

    Lou Z, Wang H, Zhu S, Ma C, Wang Z. Антибактериальная активность и механизм действия хлорогеновой кислоты. J Food Sci. 2011; 76: M398–403.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 77.

    Прасад Н., Картикеян А., Картикеян С., Редди Б. Ингибирующее действие кофейной кислоты на пролиферацию раковых клеток по окислительному механизму в линии клеток фибросаркомы человека HT-1080.Mol Cell Biochem. 2011; 349: 11–9.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 78.

    Равиндран Р., Читра Н.Д., Дипа П.Е., Аджиткумар К.Г., Чандрасекхар Л., Шрилекха К. и др. In vitro эффекты кофейной кислоты, нортриптилина, прекоцена I и кверцетина против Rhipicephalus annulatus (Acari: Ixodidae). Exp Appl Acarol. 2017; 71: 183–193.

  • 79.

    Pragasam SJ, Venkatesan V, Rasool M. Иммуномодулирующее и противовоспалительное действие p-кумаровой кислоты, обычного диетического полифенола на экспериментальное воспаление у крыс.Воспаление. 2013; 36: 169–76.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 80.

    Chen AY, Chen YC. Обзор диетического флавоноида кемпферола на здоровье человека и химиопрофилактику рака. Food Chem. 2013; 138: 2099–107.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 81.

    Mulabagal V, Wang H, Ngouajio M, Nair MG. Характеристика и количественная оценка полезных для здоровья антоцианов в разновидностях цикория листьев ( Cichorium intybus ).Eur Food Res Technol. 2009; 230: 47–53.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 82.

    Эрнст М., Чаттертон, штат Нью-Джерси, Харрисон, Пенсильвания. Углеводные изменения в цикории ( Cichorium intybus, L. var. Foliosum) во время роста и хранения. Sci Hortic. 1995; 63: 251–61.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 83.

    Иварссон Э., Лю Х.Й., Диксвед Дж., Роос С., Линдберг Дж.Влияние включения цикория в рацион на основе злаков на усвояемость, размер органов и фекальную микробиоту у растущих свиней. Животное. 2012; 6: 1077–85.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 84.

    Лю Х., Иварссон Э., Лунд Т, Линдберг Я. Цикорий ( Cichorium intybus L.) и злаки по-разному влияют на развитие кишечника у цыплят-бройлеров и молодых свиней. J Anim Sci Biotechnol. 2013; 4:50.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 85.

    Роберфроид МБ. Представляем фруктаны инулиноподобного типа. Br J Nutr. 2005; 93: S13–25.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 86.

    Mejer H, Roepstorff A, Thamsborg SM. Влияние диетического включения сушеных корней цикория на Oesophagostomum spp. инфекции у естественно инфицированных свиноматок. 22-я Международная конференция Всемирной ассоциации развития ветеринарной паразитологии. Канада: Калгари; 2009 г.п. 22–3.

    Google ученый

  • 87.

    Йенсен А., Мейер Х., Мёльбак Л., Лангкьер М., Йенсен Т.К., Анген О. и др. Влияние диеты с богатыми фруктаном корнями цикория на кишечных гельминтов и микробиоту с особым акцентом на Bifidobacteria и Campylobacter у поросят в период отъема. Животное. 2011; 5: 851–60.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 88.

    Петкявичюс С., Кнудсен К.Э., Муррелл К.Д., Вахманн Х. Влияние инулина и клетчатки сахарной свеклы на инфекцию Oesophagostomum dentatum у свиней. Паразитология. 2003; 127: 61–8.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 89.

    Петкявичюс С., Муррелл К.Д., Кнудсен КЕБ, Йоргенсен Х., Рёпсторфф А., Лауэ А. и др. Влияние короткоцепочечных жирных кислот и молочных кислот на выживаемость Oesophagostomum dentatum у свиней.Vet Parasitol. 2004. 122: 293–301.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 90.

    Матрос ФК. Сесквитерпеновые лактоны как таксономические признаки у сложноцветных. Bot Rev.1982; 48: 121–595.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 91.

    Schmidt TJ. Соотношение структура-активность сесквитерпеновых лактонов. Stud Nat Prod Chem. 2006; 33: 309–92.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 92.

    Гершензон Дж., Дударева Н. Функция терпеновых натуральных продуктов в мире природы. Nat Chem Biol. 2007; 3: 408–14.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 93.

    Chadwick M, Trewin H, Gawthrop F, Wagstaff C. Лактоны сесквитерпеноидов: польза для растений и людей. Int J Mol Sci. 2013; 14: 12780–805.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 94.

    Кейзер Дж., Утцингер Дж. Трематодоз пищевого происхождения: современная химиотерапия и достижения с применением артемизининов и синтетических триоксоланов. Trends Parasitol. 2007. 23: 555–62.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 95.

    Ghantous A, Gali-Muhtasib H, Vuorela H, Saliba N, Darwiche N. Что заставило сесквитерпеновые лактоны пройти клинические испытания рака? Drug Discov сегодня. 2010; 15: 668–78.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 96.

    Meshnick SR. Артемизинин: механизмы действия, резистентность и токсичность. Int J Parasitol. 2002; 32: 1655–60.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 97.

    Тилли Л., Страймер Дж., Гнэдиг Н.Ф., Ральф С.А., Фидок Д.А. Действие и устойчивость к артемизинину в Plasmodium falciparum . Trends Parasitol. 2016; 32: 682–96.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 98.

    Amorim MHR, Gil da Costa RM, Lopes C, Bastos MMSM. Сесквитерпеновые лактоны: неблагоприятное воздействие на здоровье и механизмы токсичности. Crit Rev Toxicol. 2013; 43: 559–79.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 99.

    Прайс К., Дюпон М., Шеперд Р., Чан Х., Фенвик Г. Взаимосвязь между химическими и сенсорными свойствами экзотических салатных культур — цветного салата ( Lactuca sativa ) и цикория ( Cichorium intybus ).J Sci Food Agric. 1990; 153: 185–92.

    Артикул

    Google ученый

  • 100.

    Фостер Дж., Кассида К., Тернер К. Анализ in vitro антигельминтной активности сесквитерпеновых лактонов кормового цикория ( Cichorium intybus L.) против преимущественно популяции яиц Haemonchus contortus . Vet Parasitol. 2011; 180: 298–306.

  • 101.

    Ferioli F, D’Antuono LF. Обновленная процедура для эффективного и одновременного извлечения сесквитерпеновых лактонов и фенолов из цикория.Food Chem. 2012; 135: 243–50.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 102.

    Peña-Espinoza M, Boas U, Williams AR, Thamsborg SM, Simonsen HT, Enemark HL. Сесквитерпеновый лактон, содержащий экстракты двух сортов кормового цикория ( Cichorium intybus ), демонстрирует отличительные химические профили и активность in vitro против Ostertagia ostertagi in vitro. Int J Parasitol Drugs Drug Resist. 2015; 5: 191–200.

  • 103.

    Нисимура Х, Кондо Й, Нагасака Т, Сато А. Аллелохимические вещества в цикории и их использование в обработанных пищевых продуктах. J Chem Ecol. 2000; 26: 2233–41.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 104.

    Шреурс Н.М., Молан А.Л., Барри Н., Макнабб В. Влияние выпаса недокопанных оленей-отъемышей на пастбищах с цикорием или многолетним райграсом / белым клевером на жизнеспособность желудочно-кишечных нематод и легочных червей. Vet Rec. 2002: 348–53.

  • 105.

    Молан А.Л., Дункан А.Дж., Барри Т.Н., Макнабб В. Влияние конденсированных танинов и сырых сесквитерпеновых лактонов, извлеченных из цикория, на подвижность личинок легочного червя оленя и желудочно-кишечных нематод. Parasitol Int. 2003. 52: 209–18.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 106.

    Peña-Espinoza M, Williams AR, Thamsborg SM, Simonsen HT, Enemark HL. Антигельминтное действие кормового цикория ( Cichorium intybus ) против свободноживущих и паразитарных стадий Cooperia oncophora .Vet Parasitol. 2017; 243: 204–7.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 107.

    Williams AR, Peña-Espinoza M, Boas U, Simonsen HT, Enemark HL, Thamsborg SM. Антигельминтная активность цикория ( Cichorium intybus ): in vitro, , влияние на нематод свиней и связь с составом сесквитерпенового лактона. Паразитология. 2016; 143: 770–7.

  • 108.

    Фостер Дж., Кассида К., Сандерсон М. Сезонные колебания концентрации сесквитерпенового лактона и состава кормового цикория ( Cichorium intybus L.) сорта. Травяной корм Sci. 2011; 66: 424–33.

    Артикул

    Google ученый

  • 109.

    de Kraker JW, Franssen MCR, Joerink M, De Groot A, Bouwmeester HJ. Биосинтез костунолида, дигидрокостунолида и лейкодина. Демонстрация катализируемого цитохромом P450 образования лактонового кольца, присутствующего в сесквитерпеновых лактонах цикория. Plant Physiol. 2002. 129: 257–68.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 110.

    Hu F, Feng S, Wu Y, Bi Y, Wang C, Li W. Количественный анализ костунолида и дегидрокостуслактона в плазме крыс с помощью сверхпроизводительной жидкостной хроматографии, электрораспылительной ионизации и масс-спектрометрии. Biomed Chromatogr. 2011; 25: 547–54.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 111.

    Peng Z, Wang Y, Gu X, Guo X, Yan C. Исследование фармакокинетики и метаболизма костунолида и лактона дегидрокостуса у крыс с помощью HPLC-UV и UPLC-Q-TOF / MS.Biomed Chromatogr. 2014; 28: 1325–34.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 112.

    Zhang J, Hu X, Gao W., Qu Z, Guo H, Liu Z, et al. Фармакокинетическое исследование костунолида и дегидрокостуслактона после перорального приема традиционной медицины Aucklandia lappa Decne методом LC / MS / MS. J Ethnopharmacol. 2014; 151: 191–7.

  • 113.

    Ferreira JFS, Gonzalez JM. Химическая и биологическая стабильность артемизинина в рубцовой жидкости крупного рогатого скота и ее кинетика у коз ( Capra hircus ).Бразилия J Vet Parasitol. 2008; 17: 103–9.

    Google ученый

  • 114.

    Cala AC, Ferreira JFS, Chagas ACS, Gonzalez JM, Rodrigues RAF, Foglio MA, et al. Антигельминтная активность Artemisia annua L., экстрактов in vitro и действие водного экстракта и артемизинина на овец, естественно инфицированных желудочно-кишечными нематодами. Parasitol Res. 2014; 113: 2345–53.

  • 115.

    Рамадан М., Гоетерс С., Ватцер Б., Краузе Е., Ломанн К., Бауэр Р. и др.Хамазуленкарбоновая кислота и матрицин: природный профен и его естественное пролекарство, идентифицированные по сходству с синтетическими лекарственными веществами. J Nat Prod. 2006; 69: 1041–5.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 116.

    Simonsen H, Weitzel C, Christensen S. Сесквитерпеноиды гвайанолида: фармакология и биосинтез. В: Рамават К., Мерильон Дж. М., редакторы. Натуральные продукты. Берлин-Гейдельберг: Шпрингер; 2013. с. 3069–98.

  • 117.

    Wagner S, Kratz F, Merfort I. In vitro поведение сесквитерпеновых лактонов и растительных препаратов, содержащих сесквитерпеновый лактон, в растворах человеческой крови, плазмы и сывороточного альбумина человека. Planta Med. 2004. 70: 227–33.

  • 118.

    Barrera P, Sülsen VP, Lozano E, Rivera M, Beer MF, Tonn C и др. Природные сесквитерпеновые лактоны вызывают окислительный стресс у Leishmania mexicana . Evid Based Complement Alternat Med. 2013; 2013: 163404.

  • 119.

    Ли К., Ибука Т., Ронг-Янг В., Гейссман Т. Взаимосвязь между структурой и антимикробной активностью сесквитерпеновых лактонов и родственных соединений. Фитохимия. 1977; 16: 1177–81.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 120.

    Ридли Р.Г. Малярия: убить паразита. Природа. 2003. 424: 887–9.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 121.

    Brunet S, Fourquaux I, Hoste H. Изменения ультраструктуры инфекционных личинок нематод жвачных животных третьей стадии, обработанных экстрактом эспарцета ( Onobrychis viciifolia ). Parasitol Int. 2011; 60: 419–24.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 122.

    Martínez-Ortíz-de-Montellano C, Arroyo-López C, Fourquaux I, JFJ TA, Sandoval-Castro C, Hoste H. Сканирующая электронная микроскопия Haemonchus contortus при воздействии растений, богатых танинами, в условиях in vivo и in vitro в условиях .Exp Parasitol. 2013; 133: 281–6.

  • 123.

    Rollinger JM, Mock P, Zidorn C, Ellmerer EP, Langer T., Stuppner H. Применение комбинированного подхода к скринингу для открытия неалкалоидных ингибиторов ацетилхолинэстеразы из Cichorium intybus . Curr Drug Discov Technol. 2005; 2: 185–93.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 124.

    Селкирк М.Э., Лазари О., Мэтьюз Дж. Б.. Функциональная геномика ацетилхолинэстераз нематод.Паразитология. 2005; 131: S3–18.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 125.

    Мартин Р.Дж. Способы действия глистогонных препаратов. Вет Дж. 1997; 154: 11–34.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 126.

    Desrues O, Mueller-Harvey I, Pellikaan WF, Enemark HL, Thamsborg SM. Конденсированные дубильные вещества в желудочно-кишечном тракте крупного рогатого скота после приема эспарцета ( Onobrychis viciifolia ) и их возможная связь с глистогонным действием.J. Agric Food Chem. 2017; 65: 1420–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 127.

    Кальдерон-Квинталь Дж., Торрес-Акоста Дж., Сандовал-Кастро С., Алонсо М., Хосте Х., Агилар-Кабальеро А. Адаптация Haemonchus contortus к конденсированным танинам: возможно ли это? Arch Med Vet. 2010; 42: 165–71.

    Артикул

    Google ученый

  • 128.

    Valderrábano J, Calvete C, Uriarte J.Влияние кормления биоактивными кормами на инфекцию и последующее развитие Haemonchus contortus в фекалиях ягненка. Vet Parasitol. 2010. 172: 89–94.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 129.

    de Toledo JS, Ambrósio SR, Borges CHG, Manfrim V, Cerri DG, Cruz AK, et al. In vitro лейшманицидная активность сесквитерпеновых лактонов из Tithonia diversifolia против Leishmania braziliensis промастигот и амастигот.Молекулы. 2014; 19: 6070–9.

  • 130.

    Циммерманн С., Фуше Дж., Де Миери М., Йошимото Ю., Усуки Т., Нтамбелени Р. и др. Изучение взаимосвязи структуры и активности сесквитерпеновых лактонов и их полусинтетических аминопроизводных как потенциальных антитрипаносомных продуктов. Молекулы. 2014; 19: 3523–38.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 131.

    Шмидт Т.Дж., Нур AMM, Халид С.А., Кайзер М., Брун Р. Отношения количественной структуры и антипротозойной активности сесквитерпеновых лактонов.Молекулы. 2009. 14: 2062–76.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 132.

    Ибрагим М., Алию А., Абдуллахи Х., Соломон Т., Токо Е., Гарба А. и др. Богатая лактоном фракция из Vernonia blumeoides : антитрипаносомная активность и облегчение паразитарной анемии и поражения органов. J Nat Med. 2013; 67: 750–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 133.

    Sülsen VP, Frank FM, Cazorla SI, Anesini CA, Malchiodi EL, Freixa B и др. Трипаноцидная и лейшманицидная активность сесквитерпеновых лактонов из Ambrosia tenuifolia Sprengel (Asteraceae). Противомикробные агенты Chemother. 2008; 52: 2415–9.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 134.

    Mo P, Ma Q, Zhao X, Cheng N, Tao J, Li J. Апоптотические эффекты противомалярийного артемизинина на мерозоиты второго поколения Eimeria tenella и паразитированные клетки-хозяева.Vet Parasitol. 2014; 206: 297–303.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 135.

    Kim JT, Park JY, Seo HS, Oh HG, Noh JW, Kim JH и др. In vitro Антипротозойные эффекты артемизинина на Neospora caninum . Vet Parasitol. 2002; 103: 53–63.

  • 136.

    Икбал А., Тарик К.А., Вазир В.С., Сингх Р. Противопаразитарная эффективность Artemisia absinthium , толтразурила и ампролиума против кишечного кокцидиоза у коз.J Parasit Dis. 2013; 37: 88–93.

    PubMed
    CAS

    Google ученый

  • 137.

    De AGF, Horsted K, Thamsborg SM, Kyvsgaard NC, Ferreira JFS, Hermansen JE. Использование Artemisia annua в качестве естественного кокцидиостата у бройлеров на свободном выгуле и его влияние на динамику заражения и продуктивность. Vet Parasitol. 2012; 186: 178–87.

    Артикул

    Google ученый

  • 138.

    Kaboutari J, Arab HA, Ebrahimi K, Rahbari S. Профилактические и терапевтические эффекты нового гранулированного препарата экстракта Artemisia на кокцидиоз бройлеров. Trop Anim Health Prod. 2014; 46: 43–8.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 139.

    Drǎgan L, Györke A, Ferreira JFS, Pop IA, Dunca I, Drgan M, et al. Воздействие Artemisia annua и Foeniculum vulgare на цыплят, сильно инфицированных Eimeria tenella (тип Apicomplexa).Acta Vet Scand. 2014; 56: 22.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья

    Google ученый

  • 140.

    Pop L, Györke A, Tăbăran AF, Dumitrache MO, Kalmár Z, Magdaş C, et al. Влияние артемизинина на цыплят-бройлеров, зараженных Eimeria acervulina , E. maxima и E. tenella в испытаниях на батареях. Vet Parasitol. 2015; 214: 264–71.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 141.

    Höglund J, Engström A, von Samson-Himmelstjerna G, Demeler J, Tydén E. Обнаружение ПЦР в реальном времени для количественной оценки уровней инфекции Ostertagia ostertagi и Cooperia oncophora в фекалиях крупного рогатого скота. Vet Parasitol. 2013; 197: 251–7.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 142.

    Робер Ф., Моррисон А., Касаэрт С., Смит Л., Кларебут Е., Скуче П. Мультиплексная тандемная ПЦР для специфической диагностики желудочно-кишечных нематодных инфекций у овец: европейское валидационное исследование.Векторы паразитов. 2017; 10: 226.

    PubMed
    PubMed Central
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 143.

    Charlier J, Duchateau L, Claerebout E, Vercruysse J. Оценка воспроизводимости молока Ostertagia ostertagi ELISA и эффекты подготовки проб. Ранее Vet Med. 2005. 68: 277–88.

    PubMed
    Статья

    Google ученый

  • 144.

    Parish JA, Parish JR.Лучший ТФ, Сондерс-младший. Сравнение цикория и райграса однолетнего для весеннего зарыбления бычков. Prof Anim Sci. 2012; 28: 579–87.

    Google ученый

  • 145.

    Sanderson MA, Labreveux M, Hall MH, Elwinger GF. Питательная ценность кормов цикория и подорожника английского. Crop Sci. 2003; 43: 1797–804.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 146.

    Ли Дж. М., Хеммингсон Н. Р., Минни Э.М.К., Кларк К.Э.Стратегии управления цикорием ( Cichorium intybus ) и подорожником ( Plantago lanceolata ): влияние на урожай сухого вещества, питательные характеристики и густоту растений. Crop Pasture Sci. 2015; 66: 168–33.

    Артикул
    CAS

    Google ученый

  • 147.

    Кельбер Т., Кройцер М., Лейбер Ф. Влияние кормления силосом из гречихи и цикория на профиль жирных кислот и сыродельные свойства молока от дойных коров. J Dairy Res.2013; 80: 81–8.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 148.

    Окерфельдт М.П., ​​Нилстранд Дж., Нил М. Силос цикория и красного клевера в рационах откорма свиней — влияние на продуктивность, бюджет времени и социальное взаимодействие. Org Agric. 2018. https://doi.org/10.1007/s13165-018-0216-z.

  • 149.

    Кельбер Т., Кройцер М., Лейбер Ф. Силосы, содержащие гречку и цикорий: качество, усвояемость и использование азота лактирующими коровами.Arch Anim Nutr. 2012; 66: 50–65.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • 150.

    Винк М. Лекарственные растения: источник антипаразитарных вторичных метаболитов. Молекулы. 2012; 17: 12771–91.

    PubMed
    Статья
    CAS

    Google ученый

  • Отели Цикорий: 31-40

    437 Отели Цикорий: 31-40

    FilterMapPlaces

    Тихий домик с тренажерным залом, виды на горы

    BozemanДома для отпуска

    32 км. NW from Chicory

    Тихий коттедж с фитнес-залом, Mountain Views расположен в Бозмане, в 11 км от государственного университета Монтаны, в районе, где можно покататься на лыжах. Из окон открывается вид на город. На всей территории предоставляется бесплатный Wi-Fi. В доме для отпуска 5 спален, гостиная…

    Дом Бозмана с великолепным видом на горы — 10 минут до DT!

    BozemanДома для отпуска

    33 км. к северо-западу от цикория

    дом Бозмана с великолепным видом на горы — 10 минут до DT! расположен в Бозмане.Расстояние до государственного университета Монтаны составляет 14 км. В доме для отпуска есть 2 спальни, телевизор с плоским экраном и кабельными каналами, а также полностью оборудованная кухня с…

    Yellowstone Hot Spring Cabins

    758 U.S. 89GardinerHoliday homes

    33 km. SW from Chicory

    Комплекс Yellowstone Hot Spring Cabins расположен в Гардинере. К услугам гостей номера с гостиной зоной. В каждом номере есть собственная ванная комната с душем, кондиционер, телевизор с плоским экраном и микроволновая печь.Также имеется холодильник, тостер и кофемашина. Дом для отпуска…

    Grandpa’s Cabin

    569 Cinnabar Basin Road, Гардинер, MT, СШАGardinerДома для отпуска

    36 км. SW from Chicory

    Дом для отпуска Grandpa’s Cabin с патио расположен в Гардинере в регионе Монтана. Дом для отпуска находится в районе, где гости могут заняться такими видами активного отдыха, как рыбная ловля и пешие прогулки. В этом бревенчатом коттедже есть 4 кровати размера «queen-size», телевизор с плоским экраном и …

    Creek Cabin

    569 Cinnabar Basin RoadGardinerHoliday homes

    36 km. SW from Chicory

    Дом для отпуска Creek Cabin с бесплатным Wi-Fi и видом на горы расположен на острове Сфинкс. Апартаменты с видом на реку и балконом. Дом для отпуска с 1 спальней, телевизором с плоским экраном и спутниковыми каналами, а также кухней с духовкой и…

    Schoolhouse Cabin

    569 Cinnabar Basin RoadGardinerHoliday homes

    36 km. SW from Chicory

    Дом для отпуска Schoolhouse Cabin расположен в городе Сфинкс в регионе Монтана. С балкона открывается вид на горы.Гости этого дома для отпуска могут пользоваться полностью оборудованной кухней и патио. Дом для отпуска оснащен спутниковым…

    McDonald’s Ranch Lodge

    569 Cinnabar Basin RoadGardinerHoliday homes

    36 км. SW from Chicory

    Дом для отпуска McDonald’s Ranch Lodge расположен в городе Сфинкс в регионе Монтана. К услугам гостей бесплатный Wi-Fi. Дом для отпуска с балконом находится в районе, где гости могут заняться такими видами активного отдыха, как катание на лыжах и рыбная ловля.В доме для отпуска…

    Yellowstone Basin Inn

    4 Maiden Basin DriveGardinerInns

    36 км. SW from Chicory

    Мини-гостиница Yellowstone Basin расположена в Гардинере. К услугам гостей принадлежности для барбекю. Во всех номерах есть телевизор с плоским экраном и спутниковыми каналами, а также собственная ванная комната. В номерах с видом на горы есть кондиционер, шкаф и бесплатный Wi-Fi. Gu…

    Ловец снов Типи Отель

    20 Девичья Бассейн DriveGardinerHotels

    36 км. SW from Chicory

    Отель Dreamcatcher Tipi расположен в Гардинере. Предоставляются полотенца и постельное белье. Гости могут заказать напитки в баре на территории. На территории также работает мини-маркет. Гости могут взять напрокат автомобиль. Окрестности популярны среди любителей хики…

    Yellowstone Park Riverfront Cabins

    550 Old Yellowstone Trail SouthGardinerHoliday homes

    38 км.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

    Деформация
    .
    Подложка
    .
    Концентрация маннита (г / л)
    .
    Выход маннита (г / г)
    .
    Производительность маннита (г / л / ч)
    .
    Список литературы
    .
    L. intermediateus B-3693 300 г / л Frc 198 0,66 1,46 [18]
    sp. B001 Glc / Frc a 65 0,65 2,71 [19]
    L.pseudomesenteroides ATCC 12291 20 г / л Frc NA 0,86 2,8 [6]
    L. псевдомезентероиды G1241 G123 2,3 Эта работа
    L. pseudomesenteroides G123 Glc / Frc / NA c 88,1 0,94 3,74 6 Эта работа

    Производство маннита гетероферментативными молочнокислыми бактериями исторически страдало от низких урожаев.Повышение скорости потребления глюкозы и внутриклеточного уровня НАДН рассматривалось как потенциальный метод получения высоких выходов маннита. Комбинированные стратегии индукции аэрации и окислительно-восстановительной модуляции значительно увеличили скорость потребления глюкозы, уровень внутриклеточного НАДН и удельную активность МДГ, что привело к увеличению продукции маннита с 64,6 до 88,1 г / л с увеличением выхода с 0,69 до 0,94 г / л. грамм. Результаты этой работы могут быть полезны при разработке эффективной стратегии получения маннита с высоким выходом.

    Благодарности

    Эта работа была поддержана проектом, финансируемым Приоритетной академической программой развития провинции Цзянсу, ключевым научно-техническим проектом провинции Цзянсу (BE2016389), ключевой лабораторией Цзянсу по экологическому топливу и химическим веществам на основе биомассы (JSBEM2016010), Национальным природным Научный фонд Китая (213).

    Список литературы

    1.

    Bankar

    SB

    ,

    Singhal

    RS

    Улучшенный биосинтез поли-ε-лизина с использованием Streptomyces noursei 2011 NRRL 5126 путем контроля растворенного кислорода во время ферментации

    Biotechn2

    652

    658

    2.

    Bradford

    MM

    Быстрый и чувствительный метод количественного определения количества белка в микрограммах, использующий принцип связывания белок-краситель

    Anal Biochem

    1976

    72

    248

    254

    3.

    Dols

    M

    ,

    Chraibi

    W

    ,

    Remaud-Simeon

    M

    ,

    Lindley

    ND

    ,

    Monsan

    PF

    mesenos во время метаболизма различных сахаров и их последствий для производства декстрансахаразы

    Appl Environ Microbiol

    1997

    63

    2159

    2165

    1685074.

    Fontes

    CPML

    ,

    Silveira

    MS

    ,

    Guilherme

    AA

    ,

    Fernandes

    FAN

    ,

    Rodrigues

    S

    Производство дрожжевого экстракта манна сульфата манн

    сок

    Biocatal Agric Biotechnol

    2013

    2

    69

    75

    5.

    Grobben

    GJ

    ,

    Peters

    SWPG

    ,

    000 Wisselink

    Wisselink

    ,

    Wisselink

    Hoefnagel

    MHN

    ,

    Hugenholtz

    J

    ,

    Eggink

    G

    Спонтанное образование маннитол-продуцирующего варианта Leuconostoc pseudomesenteroides 2 9000, выращенного 9000 9000, 9000 Enteroides, 9000, 9000, 9000, 9000, 9000, 9000 Enseudomesenteroides.

    67

    2867

    2 870